Картошка болезни: Болезни картофеля | Сингента

Содержание

Болезни картофеля | Сингента

АЛЬТЕРНАРИОЗ
Заболевание обнаруживается ежегодно, но проявляется особенно сильно в годы с тёплым летом при выпадении частых дождей или с обильными ночными росами. Поражение картофеля в годы эпифитотий может достигать 70%. Урожай клубней снижается на 20–40% из-за отмирания листьев в период клубнеобразования. Читать далее…


АНТРАКНОЗ
Вредоносность антракноза заключается в преждевременном отмирании ботвы и загнивании клубней в период вегетации и хранения. Читать далее…


КОЛЬЦЕВАЯ ГНИЛЬ
Кольцевая гниль относится к наиболее вредоносным болезням картофеля. Потери урожая от нее варьируются от 11 до 45% и значительно усиливаются в период хранения. В ряде стран эта болезнь считается карантинной и партии картофеля… Читать далее…


МОКРАЯ ГНИЛЬ
Заболевание вредоносно в период хранения картофеля, чему способствует неправильный режим хранения с недостаточной вентиляцией, влажностью выше 90% и температурой воздуха выше 15–18° С.

Ежегодно теряется 5–10% урожая, а в отдельные годы до 30–50%. Читать далее…


ПАРША ОБЫКНОВЕННАЯ
Болезнь развивается с начала клубнеобразования и продолжается до конца вегетации. Поражаются преимущественно клубни, реже столоны и корни. Читать далее…


РАНЕВАЯ ВОДЯНИСТАЯ ГНИЛЬ
Вредоносность раневой водянистой гнили заключается в загнивании клубней в период хранения. Кроме этого, заражённые семенные клубни являются причиной выпадания растений в поле. Читать далее…


РЕЗИНОВАЯ ГНИЛЬ
Проявляется в основном в загнивании клубней во время хранения. Даже слабопораженные посадочные клубни являются причиной изреживания всходов на 10–15% и замедления роста растений, приводящего к снижению урожая на 20–30%, а потери урожая в период хранения могут достигать 15%. 

Читать далее…


РИЗОКТОНИОЗ
Заболевание особенно вредоносно в холодные, дождливые вёсны, когда гриб, поражая ростки в почве, вызывает их загнивание и преждевременную гибель, что приводит к выпадам растений и изреженности посадок картофеля (на фото). Потери урожая могут в итоге достигать 20–25%. Читать далее…


СЕРЕБРИСТАЯ ПАРША
Особую актуальность серебристая парша приобрела в настоящее время в связи с реализацией мытого картофеля в прозрачных упаковках, когда признаки ее становятся хорошо заметными. Читать далее…


ФИТОФТОРОЗ
Фитофтороз — самое вредоносное заболевание картофеля. Главная опасность болезни это высокая скорость её развития. Читать далее…


ФОМОЗ
Болезнь приводит к преждевременному отмиранию поражённой ботвы и гибели клубней. Особенно вредоносно заболевание в период хранения (потери клубней могут достигать 25%). Читать далее…


ФУЗАРИОЗНАЯ СУХАЯ ГНИЛЬ КЛУБНЕЙ
Фузариозная сухая гниль (фузариоз клубней) вызывается разными видами несовершенных грибов рода Fusarium. Потери клубней при хранении могут достигать 10–15%. Читать далее…


ЧЕРНАЯ НОЖКА
При этом заболевании загнивает нижняя часть стебля молодых растений картофеля и развивается мокрая гниль клубней. Недобор урожая в зависимости от погодных условий и агрессивности патогена может колебаться от 1–2 до 50–75%. Читать далее…

причины и признаки появления, способы избавления

Каждый, кто выращивает картофель, знает, как много усилий нужно приложить, чтобы получить обильный здоровый урожай. Если не обеспечить посадки правильным, своевременным уходом, можно потерять большую часть всходов и клубней. Картофель страдает от нашествий колорадского жука — главного вредителя этой овощной культуры. Если вовремя не проводить обработку, насекомое и его личинки могут погубить до 90 % урожая. К уменьшению размера клубней и снижению качества урожая приводят растущие в грядах сорняки. Они конкурируют с ростками картофеля за питательные вещества, влагу и солнечный свет. Если не использовать гербициды и не проводить прополку, сорняки не только подавят рост картофеля, но также приведут к распространению инфекций и бактерий. Самые распространенные болезни картошки вызваны поражением грибами и бактериями.

О симптомах и методах борьбы поговорим ниже.

Грибные и бактериальные болезни

Обычно споры грибов-возбудителей находятся в почве и ожидают сезона посадок. Инфицированные клубни могут сгнить в поле, но, если заражение случилось в конце периода вегетации, гниение проявит себя скорее только во время хранения. А уж вода и крахмал, которые содержатся в клубнях картофеля, станут благоприятной средой для интенсивного размножения не только микроскопических грибов, но и бактерий, вызывающих гниение. Если не принимать профилактических мер, не обрабатывать клубни современными препаратами и не применять агротехнических мер, из года в год развитие болезней будет усиливаться. Картошка на участке окажется полностью зараженной, неспособной давать богатый урожай, и станет непригодной в пищу. От нее останется только избавляться. Ниже рассмотрим наиболее распространенные виды болезней картофеля.

Фитофтороз

Фитофтороз, или картофельная гниль, — распространенное грибное заболевание. Оно поражает клубни, листву и стебли картофеля, особенно в период цветения. На нижних листьях и стебле появляются небольшие темно-бурые пятна, которые быстро увеличиваются. Листья начинают увядать, чернеть и засыхать. Если погода влажная, то загнивать. Вокруг пятен появляется белесый, похожий на паутинку, налет. На клубнях фитофтороз оставляет вдавленные резко очерченные серые пятна, которые со временем меняют цвет на бурый и твердеют. В разрезе видна ржавчина, покрывающая периферическую часть мякоти и распространяющаяся к центру клубня.

Болезнь поражает клубни, если споры гриба попали с дождевой водой с листьев в почву или при уборке урожая, если они соприкасались с зараженной ботвой. Болезнь не распространяется во время хранения, вызывает распространение других микроорганизмов, которые могут привести к гниению.

Как вылечить фитофтороз

«Ревус®». Препарат защищает картофель от грибного фитофтороза. Он не смывается дождями уже через час после опрыскивания и надолго защищает листья, благодаря особенности химического вещества, входящего в состав, проникать внутрь листовых пластинок растения.

Лечебная активность препарата «Ревус®» помогает надолго сохранить урожай картофеля. Он выпускается в виде концентрата суспензии и, если не нарушать рекомендованные производителем пропорции смешивания с водой, раствор нетоксичен для растений и клубней. Чтобы предотвратить распространение грибной инфекции, картофель нужно опрыскать раствором в период вегетации и потом повторять с промежутком в 7–14 дней.

Ризоктониоз

Возбудитель болезни — базидиальный гриб, споры которого развиваются при температуре 9–27 °С и высокой влажности. Он поражает стебли, клубни и корни взрослого картофеля. Заболевание больше известно как черная парша, так как оставляет на поверхности клубня черную твердую коросту неправильной формы, напоминающую приставшую почву. На стеблях развитие гриба вызывает появление грязно-белого налета, похожего на войлочную пленку. На корнях и ростках появляются бурые пятна и язвы или образуется шероховатость. Если сделать поперечный разрез, будут видны твердые ржавые образования.

Споры гриба зимуют на клубнях и в почве. Если посадить больные клубни, грибница попадает в молодые ростки и вызывает гниение побегов и их гибель.

От того, когда появилась инфекция, от тяжести заболевания, внешних условий перед сбором и устойчивости самого сорта картошки зависят количественные потери урожая.

Как вылечить ризоктониоз

«Табу®ТРИО». Универсальный препарат, который защитит урожай картофеля не только от инфекционных болезней, но также от вредных насекомых и погодных стрессов. В его состав входят три активных компонента, которые успешно борются с комплексом проблем. Во-первых, препарат устраняет почвенные грибные инфекции — ризоктониоз (паршу) и фузариоз (гниль). Он действует до 12 недель. Во-вторых, применение раствора предотвращает появление колорадского жука, а также проволочника на срок до полутора месяцев. В-третьих, «Табу

®ТРИО» улучшает иммунитет растения, способствует повышению урожайности, росту размера и количества клубней. Препаратом необходимо один раз обработать клубни картофеля перед посадкой.

Фузариоз

Внешний признак этого грибного заболевания — увядание кустов картофеля, которое проявляется в самом начале цветения. Сначала желтеют края листа, потом появляются бурые пятна с яркой желтой каймой. Если погода сухая, то листья засыхают и начинают опадать. В дождливую влажную погоду — обвисают вдоль стебля. На увядших листьях появляется сероватый грязный налет. Грибница проникает в глазки клубней картофеля. Из-за этого во время хранения они загнивают и начинают пылить. Там, где были глазки, остаются впадинки. Споры гриба зимуют на остатках растений и в почве. Они могут вызвать заболевание не только культуры картофеля, но также поражать томат, перец, баклажан, хмель и другие растения. Источником заражения становятся сами больные клубни, остатки ботвы или инфицированная почва. Кроме того, причиной инфицирования также становятся механические повреждения клубней.

Как вылечить фузариоз

«Ордан®». Это фунгицид широкого спектра действия. Лекарство защитит не только картофель, но и томаты, и огурцы от болезней. В его состав входят два активных вещества, с разным механизмом воздействия. «Ордан®» можно применять для профилактики заболеваний, так как он обладает искореняющими и защитными свойствами. У возбудителей болезней не развивается привыкание к препарату. Для защиты картофеля от фитофтороза и альтернариоза нужно опрыскать раствором препарата растения в период вегетации. Чтобы предотвратить появление инфекции, первое опрыскивание нужно провести до смыкания ботвы в рядках. Или не позже чем через 2 дня после инфицирования. Каждое следующее опрыскивание нужно проводить с интервалом в одну-две недели. Для удобства использования препарат фасуется в инновационные водорастворимые упаковки.

Гниль

Бывает мокрая и сухая. Несмотря на кажущуюся схожесть названий, их возбудители разные. Мокрая гниль вызвана размножением полусапрофитных бактерий, которые развиваются в переувлажненной почве, но сильнее всего проявляются во время хранения картошки. Больные клубни приобретают темно-бурый цвет и становятся мокрыми и мягкими. Их мякоть превращается в склизкую тягучую кашицу с неприятным запахом. Если хранить картофель во влажном месте с резкими перепадами температуры, бактерии будут очень быстро размножаться. Сухая гниль — это грибная болезнь. На пораженных ей клубнях возникают матовые или серо-бурые пятна, мякоть также приобретает бурый цвет, высыхает и становится трухлявой. При хранении картофель, пораженный сухой гнилью, высыхает. Если в месте хранения влажность воздуха выше 90 %, поражения становятся мокрыми, но не разжижаются в неприятно пахнущую массу. Клубни просто становятся трухлявыми.

Парша

Видов этой инфекции довольно много. Помимо черной (ризоктониоза), существуют также обыкновенная, бугорчатая, порошистая и серебристая парша. Все они вызваны распространением грибов. Как правило, они порождают появление на поверхности клубня язвочек и наростов разной формы и величины. Иногда несколько видов грибов могут поражать один и тот же клубень. Тогда картофельная кожура темнеет, становится неровной, шелушится. Условиями для развития инфекции служат избыточная влажность грунта и температура в пределах 12–18 °С.

Как избавиться от парши

Для этого хорошо подойдет препарат Табу®ТРИО. Защитную обработку картофеля от болезней нужно проводить в несколько этапов. Во-первых, необходимо протравливать семенные клубни, которые помещают на хранение. Тогда новый урожай с высокой вероятностью будет расти здоровым с самого начала. Следующую обработку нужно провести перед посадкой. После всхода ростков в период вегетации проводят опрыскивание и повторяют каждые 7–14 дней.

Лечение болезней картофеля

«Лазурит®». Средство, которое защитит картофельные гряды от сорняков: лебеды, мари, амброзии, бодяка, щирицы и других. Оно создает на поверхности почвы защитный слой и уничтожает сорные растения еще до того, как они прорастут. Длительность его действия составляет 10–20 дней после всходов. Препарат защищает от повторного появления сорняков до 2 месяцев. Он выпускается в форме смачивающегося порошка, который нужно развести в воде в пропорции, указанной в инструкции, и опрыскать почву до всходов картофеля. Повторное опрыскивание провести, когда высота ботвы достигнет 5 см. 10 грамм препарата (одна упаковка) хватает на обработку одной сотки. Применение препарата не оказывает негативного влияния на картофельные клубни.

«Миура®». Современное средство, которое борется как с однолетними, так и с многолетними сорняками: пыреем, овсюгом, щетинником и другими. Он не повреждает картофель, так как действует избирательно. Препарат быстро впитывается в листья и надземную часть сорняков и способствует их быстрому исчезновению. Уже через неделю-полторы эффект от применения препарата станет заметен. «Миура®» выпускается в виде концентрата эмульсии, предназначенного для опрыскивания. Раствор гербицида нужно нанести на вегетирующие сорняки, выросшие до 10–15 см.

Профилактика болезней картофеля

Агротехнические мероприятия обязательно нужны для профилактики грибных и бактериальных заболеваний.

  • Для профилактики этих инфекций следует отбирать для посадки только здоровый семенной материал, удалять пораженные клубни, обрабатывать и хранить картофель под посадку отдельно от других овощей.
  • После сбора урожая клубни картошки необходимо просушить. А через 2–3 недели после начала хранения провести осмотр урожая на появление первых признаков гнили. Затем регулярно осматривать раз в 1–2 недели, чтобы не появлялось проростков.
  • В помещении хранения не должно быть избыточной влажности и сильных перепадов температуры.
  • Необходимо проводить обработку ростков картошки в период вегетации не только от инфекционных заболеваний, но и от вредителей — колорадского жука и других насекомых и их личинок, а также гербицидами от появления сорняков.
  • Предотвратить появление сорняков также поможет мульчирование почвы.

Как сохранить семенной картофель

Чтобы защитить клубни, отобранные под посадку в новый сезон, их нужно обработать препаратом «Синклер®», предотвращающим появление и распространение грибных и бактериальных инфекций во время хранения.

«Синклер®» — это протравитель клубней, который не дает развиться целому комплексу почвенных болезней. Препарат разводят в строгой пропорции 2 мл на 100 мл воды и опрыскивают получившимся раствором семенной картофель, который затем откладывают на хранение отдельно от клубней, предназначенных в пищу. Средство содержит краситель красного цвета, так что обработанный картофель всегда можно отличить.

Выращивание урожая может приносить не только заботы. Обильный здоровый урожай помогут получить вышеперечисленные современные препараты. Их можно купить в сети гипермаркетов: Castorama, «Ашан Сад», «Глобус», «Леруа Мерлен», ОБИ и других. Или в интернет-магазинах: OZON, Wildberries и пр.


Советы по защите

Американская белая бабочка

Белокрылка тепличная

Белянки

Блохи

Боярышница

Вертициллезное увядание

Вытягивается рассада

Двудольные сорняки

Клещи иксодовые

Клещи растительноядные

Клопы постельные

Коккомикоз

Колорадский жук

Крот

Листовёртки

Медведка

Медяница

Мокрицы

Моль капустная

Моль комнатная

Муравьи

Муха капустная

Муха луковая

Мучнистая роса

Парша

Пилильщики

Плодожорка яблонная

Проволочники

Ржавчина

Слизни, улитки

Совки

Тараканы

Тли

Трипсы

Чёрная пятнистость

Черная ножка

Щитовки

Советы по защите

Американская белая бабочка

Белокрылка тепличная

Белянки

Блохи

Боярышница

Вертициллезное увядание

Вытягивается рассада

Двудольные сорняки

Клещи иксодовые

Клещи растительноядные

Клопы постельные

Коккомикоз

Колорадский жук

Крот

Листовёртки

Медведка

Медяница

Мокрицы

Моль капустная

Моль комнатная

Муравьи

Муха капустная

Муха луковая

Мучнистая роса

Парша

Пилильщики

Плодожорка яблонная

Проволочники

Ржавчина

Слизни, улитки

Совки

Тараканы

Тли

Трипсы

Чёрная пятнистость

Черная ножка

Щитовки

Советы по защите

Американская белая бабочка

Белокрылка тепличная

Белянки

Блохи

Боярышница

Вертициллезное увядание

Вытягивается рассада

Двудольные сорняки

Клещи иксодовые

Клещи растительноядные

Клопы постельные

Коккомикоз

Колорадский жук

Крот

Листовёртки

Медведка

Медяница

Мокрицы

Моль капустная

Моль комнатная

Муравьи

Муха капустная

Муха луковая

Мучнистая роса

Парша

Пилильщики

Плодожорка яблонная

Проволочники

Ржавчина

Слизни, улитки

Совки

Тараканы

Тли

Трипсы

Чёрная пятнистость

Черная ножка

Щитовки

Советы по защите

Американская белая бабочка

Белокрылка тепличная

Белянки

Блохи

Боярышница

Вертициллезное увядание

Вытягивается рассада

Двудольные сорняки

Клещи иксодовые

Клещи растительноядные

Клопы постельные

Коккомикоз

Колорадский жук

Крот

Листовёртки

Медведка

Медяница

Мокрицы

Моль капустная

Моль комнатная

Муравьи

Муха капустная

Муха луковая

Мучнистая роса

Парша

Пилильщики

Плодожорка яблонная

Проволочники

Ржавчина

Слизни, улитки

Совки

Тараканы

Тли

Трипсы

Чёрная пятнистость

Черная ножка

Щитовки

Болезни картофеля с описанием и фото.

| Klumba-plus

После уборки картофеля многие огородники отмечают снижение качества урожая из-за появления болезней, образования корявых треснутых клубней в почве. «Из-за чего болеет картофель? Почему клубни трескаются в земле?»: давайте разберём подробно.

Болезни картофеля с описанием и фото:

Картофель корявый с трещинами появляется не из-за болезни, а из-за неблагоприятных условий сложившихся во время роста клубней. Уродливый картофель можно употреблять в пищу, но его сложно чистить, в отличие от ровных округлых овощей, он не имеет товарного вида и плохо хранится, так как подвержен загниванию.

Огородники отмечают, что есть сорта картофеля подверженные растрескиванию. Больше всего уродливых клубней появляется на участках с тяжёлой глинистой землей или в дождливое лето, так как тогда почва сильно уплотняется. Во второй половине лета, когда ботва у картофеля уже большая, нет возможности взрыхлить землю, а в этот период клубни активно растут и если им препятствует плотная земля, то их как будто разрывает изнутри, образуются глубокие трещины.

Чтобы получать урожай красивых ровных клубней тяжёлую глинистую почву нужно обязательно разрыхлять органикой – перепревшим навозом, компостом, листовым перегноем, старыми опилками, торфом и любым другим разрыхлителем. Перед посадкой картофеля землю глубоко перекапывают, разбивая комки. При уходе за картошкой рыхлите, окучивайте её как можно чаще. Также выбирайте сорта картофеля устойчивые к растрескиванию.

Парша картофеля выявляется уже при сборе урожая, на клубнях обнаруживаются темные пятна как язвочки, они могут быть единичными или полностью покрывать поверхность клубней. Парша картофеля – это бактериальная болезнь, от которой трудно избавиться, так как инфекция долго сохраняется на клубнях, в хранилище и в почве. Заболевшие клубни нельзя хранить, их сразу уничтожают. При массовом распространении парши придётся полностью заменять семенной картофель, менять место хранения и место посадки. Появлению парши способствует внесение свежего навоза или куриного помёта, а также закисление почвы.

Если при срезе у клубней вы обнаружите темные кольца, значит, растения атаковала бактериальная болезнь, которую ещё называют кольцевая гниль. Иногда внешние признаки болезни на клубнях картошки не заметны, увидеть темные кольца можно только после разрезания картошки. Болезнь показывает себя летом, когда на листьях появляются темные пятна, они вянут и скручиваются, это значит, болезнетворные бактерии уже проникли в стебли, начали забивать сосуды.

Чтобы это заболевание картошки не появилось на вашем участке, используйте проверенный семенной картофель, храните его отдельно от картошки для еды, проводите обработку семенных клубней препаратом «Максим».

Фитофтороз является опасным заболеванием не только помидор, но и картофеля. При массовом распространении фитофтороза можно потерять значительную часть урожая. Клубни картофеля поражаются фитофторозом через ботву, через соединительный канатик, чаще около него появляются бурые вдавленные пятна, которые разрастаются и вскоре начинают гнить. Фитофтороз легко передаётся через зараженные клубни, ботву, почву, поэтому заболевшие растения сразу уничтожают целиком, а посадку картошки на будущий год проводят на новом месте. Нельзя сажать рядом картошку и томаты, так как эти родственные растения легко заражаются друг от друга фитофторозом. Первые признаки появления болезни – появления темных бурых пятен на листьях и их увядание.

Сухая гниль клубней картофеля начинается с небольших темных пятен на кожуре, они могут появиться из-за незначительных повреждений, срезов, через ранки болезнетворные бактерии проникают внутрь клубня и начинают своё развитие. При развитии сухой гнили клубень остаётся на первый взгляд целым, но он теряет в весе, так как внутри образуется пустая полость с желтой или коричневой поверхностью. Внешняя ранка или пятно покрывается белым налётом или плесенью. Сухая гниль легко переходит в мокрую гниль, такие клубни непригодны для еды, их сразу выбрасывают, чтобы гниль не переходила на здоровые овощи. Чтобы предотвратить появление сухой гнили, тщательно перебирайте картошку, отбраковывая все повреждённые клубни.

Хорошей профилактикой от болезней будет просушка картошки на солнце в течение 2-3 часов, тогда ультрафиолет убьёт большинство болезнетворных бактерий и спор. Семенной картофель на солнце можно сушить дольше, пока он не позеленеет, тогда он приобретёт защиту не только от болезней, но и от грызунов.

В хранилище обязательно должна быть умеренная влажность и прохлада в пределах от +1 до +7 градусов, при температуре более +10 градусов большинство болезнетворных бактерий и спор переходят в активное состояние.

Овощи: Картофель, выявление болезней | Центр сельского хозяйства, продовольствия и окружающей среды при Университете Массачусетса, Амхерст,

Существует множество болезней, поражающих клубни картофеля, поэтому, ежегодно перебирая урожай картофеля, найдите время, чтобы проверить наличие симптомов болезни. Правильная идентификация поможет вам решить, какие клубни будут хорошо храниться, а какие следует продавать в качестве столового сырья, а также даст вам лучшее представление о том, какие болезни, передающиеся через почву, присутствуют на ваших полях, что улучшит ваши будущие севообороты.

Парша обыкновенная (

Streptomyces spp.)

Для получения более подробной информации об этом заболевании см. нашу полную статью «Картофель, парша».

Обыкновенная парша вызывает круглые или неправильные поражения от желтовато-коричневого до темно-коричневого цвета с грубой текстурой. Парша может быть поверхностной (коричневая парша), слегка приподнятой (вырвавшаяся парша) или вдавленной (ямчатая парша)

парша

). Тип поражения зависит от сорта картофеля, зрелости клубней при заражении, содержания органического вещества в почве, штамма возбудителя и окружающей среды.Обыкновенная парша контролируется или значительно подавляется при уровне pH почвы 5,2 или ниже, хотя близкородственный, но менее распространенный вид Streptomyces, известный как кислотная парша, может выживать при pH до 4,0.

Изображение 1. Парша обыкновенная, Р. В. Самсон

Ранняя гниль (

Alternaria solani )

Для получения более подробной информации об этой болезни, пожалуйста, ознакомьтесь с нашей полной статьей Solanaceous, Early Blight.

Ранняя гниль обычно поражает листву картофеля, но может также поражать и клубни.Повреждения на клубнях темные, вдавленные и круглые, часто окаймленные выпуклой тканью от фиолетового до серого цвета. Нижняя мякоть сухая, кожистая и коричневая. Повреждения могут увеличиваться в размерах при хранении, а клубни сморщиваются.

Изображение 2.  Ранняя гниль, С. Дженсон

Fusarium Dry Rot (

Fusarium spp.)

Фузариозная сухая гниль вызывает внутреннюю сухую гниль клубня картофеля от светлой до темно-коричневой или черной. Гниль может развиться на месте повреждения, такого как ушиб или порез.Возбудитель проникает в клубень, часто загнивая в центре. Обширное гниение вызывает сморщивание и разрушение ткани, обычно оставляя темные вдавленные участки на внешней стороне клубня и во внутренних полостях.

Изображение 3.  Фузариозная сухая гниль, C. Averre

Черная точка (

Colletotrichum coccodes )

На листьях картофеля симптомы черной точки почти неотличимы от симптомов альтернариоза. На клубнях он образует крошечные черные склероции (покоящиеся структуры гриба).Симптомы на клубнях можно легко спутать с серебристой паршой.

Серебряный налет (

Helminthosporium solani )

Серебряный налет поражает только перидерму (кожу) клубня. Повреждения начинаются на конце столона в виде небольших бледно-коричневых пятен, которые может быть трудно обнаружить при сборе урожая, но они будут продолжать развиваться при хранении. При хранении поражения могут потемнеть, кожа может отслоиться, а множество мелких круглых поражений могут сливаться, образуя большие пораженные участки. Клубни также могут стать сухими и сморщенными из-за чрезмерной потери влаги при хранении.

Черный налет и ризоктониозный рак (

Rhizoctonia solani )

Черный налет носит чисто косметический характер и не снижает урожайность даже при хранении. Черные твердые массы неправильной формы на поверхности клубня – это зимующие структуры (склероции) гриба. Присутствие этих склероциев можно свести к минимуму, собирая клубни вскоре после забоя виноградной лозы и завязывания кожуры. Хотя сами по себе склероции не наносят вреда, они позволяют возбудителю выжить в почве и служат доказательством его присутствия.В прохладных влажных почвах R. solani может вызывать темные вдавленные поражения на подземных побегах и столонах. Эти поражения могут перекрывать поступление питательных веществ, убивая клубни, или уменьшать перенос крахмала в клубни, уменьшая их размер. Язвы также могут образовываться на самих клубнях, обычно на столоне или в чечевицах. Язвы на клубнях, которые могут быть маленькими и поверхностными, но могут быть большими, вдавленными и некротизированными.

Изображение 4.  Черный налет, Г. Холмс

Розовая гниль (

Phytophthora erythroseptica ) и Pythium Leak ( Pythium spp.)

Заражение розовой гнилью начинается с конца столона и приводит к гниению и обесцвечиванию перидермы с четкими границами между здоровой и больной тканью. На воздухе мякоть клубней становится розовой, а затем коричнево-черной. Питиум spp. вызывающие утечку инфекции, проникают в клубни через ранки урожая и продолжают развиваться при транспортировке и хранении. Инфекции приводят к внутренней водянистой, серой или коричневой гнили с четкими красно-коричневыми линиями, разграничивающими здоровые и больные ткани.

Изображение 5. Розовая гниль, УМН

Фитофтороз (

Phytophthora infestans )

Для получения более подробной информации об этом возбудителе см. нашу полную статью Solanaceous, фитофтороз.

Фитофтороз поражает листву и клубни картофеля. Лиственные симптомы начинаются с коричневых или черных, пропитанных водой поражений на листьях и стеблях, которые во влажных условиях образуют видимые белые спороношения по краям поражений. Целые растения и поля могут быстро разрушиться. Заражение клубней инициируется спорангиями с листвы, смываемыми в почву, и обычно начинается с ран, глазков или чечевичек.Повреждения имеют медно-коричневый, красный или пурпурный цвет, а на поверхности клубней при хранении или отбракованных кучах могут возникать белые спороношения. Зараженные клубни восприимчивы к заражению бактериями мягкой гнили, которые могут превратить целые ящики с картофелем при хранении в вонючую гнилую массу.

Изображение 6. Фитофтороз, Р. В. Самсон

Вирус картофеля Y

Для получения более подробной информации об этом заболевании см. нашу полную статью Solanaceous, Potato Virus Y.

Вирус Y картофеля (PVY) может вызывать некротические кольцевые пятна на клубнях, в зависимости от того, какой штамм вируса присутствует, какой сорт картофеля выращивается и когда произошло заражение. Пораженные клубни имеют шероховатые кольца темно-коричневой или покрасневшей кожуры. Некроз под кольцами может распространиться на мякоть клубня. Некротические явления в клубнях часто усиливаются после хранения. Сорта картофеля различаются по своей восприимчивости к PVY и симптомам, которые они проявляют на листве и клубнях; Юкон Голд особенно подвержен некрозу клубней. Если вы считаете, что видите симптомы PVY на листве или клубнях, свяжитесь со Сью по адресу [email protected]

Изображение 7. Некротический штамм вируса Y картофеля на клубнях Юкон Голд, http://potatovirus.org

Физиологические расстройства

Черное сердце вызвано недостатком кислорода во время хранения, в результате чего ткань отмирает изнутри и становится черной. Это состояние необратимо, но если вы быстро его заметите и исправите условия хранения, вы сможете предотвратить поражение всего урожая.

Brown Center и Hollow Heart — это внутренние физиологические расстройства картофеля, которые часто возникают вместе. Коричневый центр представляет собой область мертвых сердцевинных клеток, которые становятся коричневыми, а полая сердцевина представляет собой полую область в форме звезды или линзы в центре клубня. Эти заболевания делают свежие клубни непривлекательными и могут снизить повторные продажи. Сильное полое сердцевина отрицательно влияет на качество картофеля для переработки на чипсы и может привести к тому, что отгрузки не будут соответствовать требованиям. Оба расстройства связаны со стрессом и чаще возникают при резком изменении условий выращивания в течение сезона. Коричневый центр и полая сердцевина, вероятно, образуются во время образования клубня, но также могут образовываться во время набухания клубня.Если болезнь возникает в начале сезона, то чаще всего ей предшествует коричневая серединка и она формируется в стеблевой части клубня, тогда как поздно формирующаяся полая сердцевина обычно возникает в конце почки без признаков коричневой сердцевины. происходит. Такие условия, как температура почвы ниже 56 ° F в течение 5–8 дней подряд или доступная влажность почвы выше 80%, вызывают начало образования коричневого центра. Заболеваемость коричневой сердцевиной и полой сердцевиной также увеличивается в периоды стресса, вызванного высокой или низкой влажностью почвы, особенно если проливные дожди идут внезапно после периода засухи.Крупные клубни более склонны к развитию заболевания, поэтому использование более близкого расстояния и отсутствие слишком большого количества пропусков в ряду может снизить частоту появления коричневой сердцевины и полой сердцевины. Существуют также различия в восприимчивости сортов картофеля: «Атлантик», широко выращиваемый картофель для производства чипсов, относительно восприимчив к обоим заболеваниям. У ‘Russet Burbank’ восприимчивость как к коричневой сердцевине, так и к полой сердцевине наиболее высока вскоре после образования клубня, когда клубни маленькие.

Изображение 8. Полое сердце, B. Phillips

 

— Сьюзен Б. Шойфеле, Овощная программа Массачусетского университета

Болезни картофеля

— узнайте, как определить фитофтороз картофеля

Фитофтороз картофеля – бич садоводов во всем мире. Эти грибковые заболевания наносят ущерб огородам в течение всего вегетационного периода, нанося значительный надземный ущерб растениям картофеля и делая клубни бесполезными. Наиболее распространенные фитофторозы картофеля названы в честь той части сезона, когда они распространены – ранняя гниль и фитофтороз.Борьба с фитофторозом картофеля сложна, но, вооружившись некоторыми знаниями, вы можете разорвать порочный круг болезни.

Как определить фитофтороз картофеля

Оба типа фитофтороза распространены в американских садах и представляют некоторый риск для других близкородственных растений, таких как помидоры и баклажаны. Симптомы фитофтороза картофеля отчетливы, если принять во внимание время их появления, что упрощает диагностику фитофтороза.

Ранняя гниль картофеля

Фитофтороз картофеля вызывается грибком Alternaria solani и сначала поражает старые листья.Споры грибов зимуют в растительных остатках и клубнях, которые остались после сбора урожая, но ждут, чтобы активироваться, пока влажность не станет высокой, а дневная температура не достигнет 75 градусов по Фаренгейту (24 C). Alternaria solani быстро проникает в ткани листа в этих условиях, вызывая видимое заражение через два-три дня.

Поражения начинаются как маленькие, темные, сухие пятна, которые вскоре распространяются на темные круглые или овальные области. Ранние очаги гнили могут иметь вид «бычьего глаза» с чередующимися кольцами приподнятых и вдавленных тканей.Иногда эти кольцевые группы окружены зелено-желтым кольцом. По мере распространения этих поражений листья могут отмирать, но остаются прикрепленными к растению. Клубни покрыты пятнами, похожими на листья, но мякоть под пятнами обычно коричневая, сухая, кожистая или пробковая при разрезании картофеля.

Картофельный фитофтороз

Картофельный фитофтороз — одно из самых серьезных заболеваний картофеля, вызываемое грибком Phytophthora infestans , и заболевание, которое единолично вызвало Ирландский картофельный голод 1840-х годов.Споры фитофтороза прорастают при уровне влажности выше 90 процентов и температуре от 50 до 78 градусов по Фаренгейту (10-26 градусов по Цельсию), но бурно разрастаются в более прохладном конце диапазона. Это заболевание часто наблюдается ранней осенью, ближе к концу вегетационного периода.

Повреждения вначале небольшие, но вскоре расширяются до больших коричневых или пурпурно-черных участков мертвой или отмирающей ткани листа. При высокой влажности на нижней стороне листьев, вдоль стеблей и черешков появляются характерные белые хлопчатобумажные спороношения.Зараженные фитофторозом растения могут издавать неприятный запах, похожий на запах гнили. Клубни часто заражаются, заполняются гнилью и открывают доступ вторичным патогенам. Кожа от коричневой до пурпурной может быть единственным видимым признаком внутреннего заболевания клубня.

Борьба с гнилью картофеля

Когда в вашем саду присутствует фитофтороз, полностью уничтожить его может быть трудно или невозможно. Однако, если вы увеличите циркуляцию вокруг ваших растений и будете тщательно поливать только при необходимости и только у основания ваших растений, вы сможете значительно замедлить распространение инфекции. Осторожно удалите все больные листья и обеспечьте дополнительный азот и низкий уровень фосфора, чтобы помочь растениям картофеля восстановиться.

Фунгициды могут быть использованы, если болезнь тяжелая, но азоксистробин, хлороталонил, манкоцеб и пираклостробин могут потребовать многократного применения для полного уничтожения грибка. Применение большинства этих химикатов необходимо прекратить за две недели до сбора урожая, но пираклостробин можно безопасно использовать за три дня до начала сбора урожая.

Предотвратите будущие вспышки фитофтороза, практикуя севооборот от двух до четырех лет, удаляя самостоятельные растения, которые могут быть переносчиками болезней, и избегая полива сверху.Когда вы будете готовы выкопать свои клубни, будьте очень осторожны, чтобы не повредить их в процессе. Раны могут позволить послеуборочным инфекциям закрепиться и испортить хранящийся урожай.

Черная ножка картофеля

Де Бур, С. Х. и Рубио, И. 2004. Черная ножка картофеля. Инструктор по охране здоровья растений . DOI: 10.1094/PHI-I-2004-0712-01. Обновлено 2016.

Черная ножка картофеля

Pectobacterium atrosepticum , Pectobacterium carotovorum subsp. brasiliensis, Pectobacterium wasabiae, Dickeya dianthicola и Dickeya solani

картофель ( Solanum tuberosum )

Авторы
Солке Х. Де Бур
Центр здоровья животных и растений, Шарлоттаун, Пенсильвания, Канада

Исаэль Рубио
Кафедра патологии растений
Университет Висконсина, Мэдисон, Висконсин, США


Почерневший стебель и увядшие листья
типичны для черной ножки картофеля.(Предоставлено С. Х. Де Буром)

Введение

Картофель выращивают во всем мире, и эта культура обычно считается четвертым по важности основным источником пищи после пшеницы, риса и кукурузы. Это одна из немногих основных продовольственных культур, которые размножаются вегетативно. Вегетативное размножение означает, что урожай картофеля выращивают не из настоящих семян, а скорее из бесполых пропагул или «семенного картофеля». Картофель — это подземные запасающие органы, известные как клубни, которые прикрепляются к материнскому растению столонами.Картофельные клубни собирают не только как источник питания для свежего рынка и продуктов переработки, но и используют для посадки нового урожая. Семенной картофель отличается от картофеля, употребляемого в пищу и перерабатываемого, только тем, что его выращивают как строго регулируемую культуру, чтобы защитить его от потенциальных патогенов и вредителей. Настоящие ботанические семена имеют тенденцию исключать многие болезнетворные микроорганизмы, даже если они присутствуют в родительском растении. С другой стороны, вегетативные пропагулы, такие как клубни, часто инфицированы или контаминированы патогенами, связанными с родительским растением. Картофель может быть заражен различными видами возбудителей, вызывающих различные виды заболеваний. Болезнь черной ножки картофеля вызывается несколькими видами бактерий, переносимыми клубнями; это означает, что они переносятся и передаются через клубни. Болезнь черной ножки может нанести серьезный экономический ущерб урожаю картофеля. Однако возникновение черной ножки во многом зависит от условий выращивания, особенно от температуры и количества осадков после посадки.

Симптомы и признаки

Листва

Болезнь черной ножки иногда развивается в начале вегетационного периода вскоре после появления всходов.Это называется ранней черной ножкой и характеризуется чахлой желтоватой листвой с жесткой прямостоячей привычкой (рис. 1). Нижняя часть подземного стебля таких растений имеет цвет от темно-коричневого до черного и сильно разложилась (рис. 2). Сердцевинная часть стебля особенно восприимчива к гниению, и у растений, зараженных черной ножкой, гниение может распространяться вверх по стеблю далеко за пределы ткани с внешне видимыми симптомами. Типичное почернение и распад нижней части стебля является причиной обозначения этого заболевания «черной ножкой».Молодые растения, пораженные черной ножкой, не могут развиваться дальше и обычно погибают.


Рисунок 1

Рисунок 2

Помимо ранней черной ножки, болезнь может развиться и позже, в период вегетации картофеля. У более взрослых растений черная ножка проявляется в виде черного обесцвечивания ранее здоровых стеблей, сопровождающегося быстрым увяданием и пожелтением листьев (рис. 3). Почернение стеблей всегда начинается под землей и распространяется вверх по стеблю, часто до тех пор, пока весь стебель не почернеет и не увянет.На ранних стадиях развития болезни у зрелых стеблей листья могут желтеть и увядать, что приводит к преждевременному старению еще до появления черной гнили. Однако после того, как весь стебель заболевает, он загнивает, засыхает и часто теряется из виду в пологе картофеля.


Рисунок 3

Болезнь черной ножки неизбежно возникает в семенном клубне, из которого выращено растение. Бактериальную гниль, возникающую в сломанных или поврежденных стеблях, не следует путать с черной ножкой, хотя симптомы имеют некоторое сходство.Воздушную гниль стебля обычно вызывает Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum , близкий родственник бактерии черной ножки. Воздушная гниль стебля обычно имеет более светлый коричневый цвет, чем черная ножка, и, хотя гниль распространяется вверх по стеблю, она не начинается под землей (рис. 4). Когда они присутствуют, эти патогены нередко обнаруживаются вместе на одном и том же хозяине или поле, поэтому иногда бывает трудно отличить черную ножку от воздушной гнили стебля только на основании симптомов.


Рисунок 4

Клубни

Существует два пути, по которым бактерия черной ножки может попасть в потомство клубней, образующихся на растении картофеля. Одним из важных путей заражения клубней является столон, которым клубень прикрепляется к растению. Клубни с болезнью черной ножки обычно сначала загнивают в месте прикрепления столона, где ткань клубня становится черной и мягкой (рис. 5). По мере прогрессирования болезни весь клубень может разлагаться или гниение может оставаться частично ограниченным внутренней перимедуллярной (или паренхиматозной) тканью, то есть тканью внутри сосудистого кольца (рис. 6).


Рисунок 5

Рисунок 6

Альтернативный путь проникновения патогена на клубни-потомки – через почву и поливную воду. Поскольку болезнь черной ножки вызывает гниение подземного стебля и семенного клубня, бактерия-возбудитель распространяется из зараженной ткани в почвенную воду и распространяется по всей корневой зоне, в которой растут потомственные клубни. Бактериальные клетки попадают в чечевички клубней-потомков и либо остаются в состоянии покоя, либо в благоприятных условиях инициируют развитие болезни и гниение.

В плохо управляемых условиях хранения картофеля с недостаточной вентиляцией и высокой влажностью бактерия-возбудитель, присутствующая в чечевичках или на поверхности клубней, может вызвать обширное разложение (рис. 7). Иногда, когда условия хранения улучшаются, очаги гниения вокруг чечевичек клубней или механически поврежденные участки останавливаются, что приводит к состоянию, известному как «твердая гниль». Твердая гниль характеризуется слегка вдавленными, коричневато-черными, сухими некротическими поражениями, окружающими отдельные чечевички или поврежденные участки.


Рисунок 7

После того, как гниение клубней картофеля вызвано бактерией черной ножки, рост вторичных бактерий часто способствует процессу гниения и изменяет симптоматику болезни. Таким образом, из первоначального заражения клубней черной ножкой развивается общая бактериальная мягкая гниль. Бактериальная мягкая гниль характеризуется тотальной мацерацией ткани клубней и выделением гнилостной темной жидкости.

Патогенная биология

Основным возбудителем черной ножки в Канаде и Соединенных Штатах является Pectobacterium atrosepticum , но другие виды бактерий также вызывают заболевание и могут быть основной причиной черной ножки в других странах.Например, в Бразилии и Южной Африке черная ножка вызывается Pectobacterium carotovorum subsp. бразильский . В Новой Зеландии возбудитель черной ножки картофеля был идентифицирован как Pectobacterium wasabiae . P. wasabiae также вызывал черную ножку в Канаде и связан с гниением клубней картофеля в США. В то время как в Европе P . atrosepticum по-прежнему является основной причиной черной ножки, все чаще заболевание вызывается видами рода Dickeya .Основными видами являются D. dianthicola и D. solani . Последний вид, в частности, вызвал большую озабоченность в европейской картофельной промышленности.


Рисунок 8

Несмотря на то, что симптомы заболевания, вызываемые различными бактериями, вызывающими черную ножку, по большей части неразличимы, бактерии различаются по своим биохимическим и физиологическим характеристикам. Однако все они являются грамотрицательными, некротрофными, неспорообразующими, палочковидными бактериями.У них есть перитрихиальные жгутики, которые обеспечивают подвижность и помогают найти хозяина. Все они принадлежат к семейству Enterobacteriaceae, в которое входят другие известные патогены человека и растений. P. atrosepticum имеет узкий круг хозяев и преимущественно поражает картофель, тогда как родственные виды, такие как Pectobacterium carotovorum и Dickeya spp. имеют широкий круг хозяев. Их выживаемость в регионах с умеренным климатом варьируется. В то время как некоторые виды, такие как P. atrosepticum , плохо выживают в почве, воде и растительных остатках, другие, такие как Dickeya spp.выжить гораздо лучше. Основным путем заражения является секреция пектолитических и других ферментов, разрушающих клеточную стенку растений, через систему секреции II типа. При выращивании на среде, содержащей полипектат натрия, у пектобактерий и диккей образуются ямки или кратеры в среде из-за выделения пектолитических ферментов, разжижающих пектат (рис. 8). Именно благодаря этим пектолитическим ферментам и генетическому составу был обозначен род Pectobacterium . Позже некоторые из пектолитических энтеробактерий были выделены в отдельный род из-за значительных различий в их геномном составе и названы Dickeya в честь американского фитобактериолога Роберта Дики.Поскольку P. atrosepticum изначально был описан как единственная причина черной ножки, он является наиболее изученным из бактерий, вызывающих черную ножку. Геном P. atrosepticum , характерный для Enterobacteriaceae, представляет собой одну кольцевую хромосому размером примерно 4,8 Мб. Секвенирование генома определило, что P. atrosepticum и родственные бактерии имеют системы секреции, важные для патогенеза.

Для идентификации и дифференциации бактерий, вызывающих черную ножку, были разработаны различные биохимические и физиологические тесты.Отличительной чертой P. atrosepticum и P. wasabiae , в отличие от родственных бактерий, является их неспособность расти при температуре выше 36°C/97°F. Каждая родственная бактерия имеет свой собственный профиль биохимического анализа, и некоторые биохимические тесты, такие как производство восстанавливающих веществ из сахарозы, использование α-метилглюкозида, производство фосфатазы и чувствительность к эритромицину, были особенно полезны для дифференциации видов. Молекулярные методы с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР) с видоспецифичными праймерами и секвенированием нуклеиновых кислот также помогают в идентификации и обнаружении.Было описано много серогрупп Pectobacterium , но почти все изоляты P. atrosepticum принадлежат к серогруппе I. Из-за относительно однородного серологического типа серологические методы, такие как иммуноферментный анализ (ELISA) и иммунофлуоресценция, могут использоваться для P y выявление атросептицума . Однако эти методы менее полезны для других видов, вызывающих черную ножку, из-за их серологической изменчивости.

Бактерии, вызывающие черную ножку, могут быть выделены из инфицированных стеблей. Они могут быть выбраны для питательной среды CVP (кристаллический фиолетовый пектат). Селективность CVP основана на присутствии кристаллического фиолетового, который ингибирует рост большинства видов грамположительных бактерий, и использовании полипектата в качестве единственного источника углерода. После выделения на CVP чистые культуры можно поддерживать на обычной бактериологической среде, такой как питательный агар или агар с бульоном Луриа.

Анализ патогенности изолятов можно легко провести путем инокуляции молодых растений картофеля. Инокуляции можно проводить либо путем протыкания зубочисткой, смазанной бактериальными клетками, либо путем инъекции 10 мкл бактериальных клеток (обычно 108 КОЕ/мл) в стебель растения картофеля.Поддержание высокой влажности путем накрывания инокулированных растений пластиковыми пакетами усиливает развитие симптомов, которое происходит в течение двух недель.


Рисунок 9

Цикл болезни и эпидемиология



Цикл болезни

Семенные клубни являются наиболее важным источником инокулята в цикле болезни черной ножки. При посадке зараженного или инфицированного семенного картофеля может произойти одно из трех: (1) Бактерии черной ножки могут проникнуть через сосудистые пучки непосредственно в растущее растение и вызвать болезнь черной ножки.Если заражение клубня ограничивается чечевичками, сначала происходит загнивание семенного клубня, а когда популяция бактерий становится достаточно большой, происходит инвазия растущего стебля. Как процесс загнивания семенных клубней, так и распространение возбудителя в стебель сильно зависят от условий окружающей среды. Влажные и прохладные условия благоприятствуют заболеванию. (2) Когда условия благоприятны для роста растения картофеля, заболевание не может возникнуть даже при наличии бактерий, вызывающих черную ножку. (3) Загнивание части семени может произойти до укоренения растения, и это тоже важное проявление черной ножки.

Наиболее частая ситуация, возникающая после посева зараженных семян, заключается в том, что часть семени загнивает после того, как растение укоренилось, и болезнь черной ножки вообще не развивается. В этом случае бактерии черной ножки, просачивающиеся из разлагающегося семенного кусочка, заражают всю корневую зону, включая развивающиеся клубни-потомки. Поверхности клубней-потомков загрязняются, при этом бактерии особенно хорошо выживают в чечевичках. При хранении зараженные клубни могут разлагаться, проявлять симптомы твердой гнили или оставаться бессимптомными.При бессимптомных, но зараженных клубнях используют для посадки, что часто бывает, цикл повторяется.

Загрязнение клубней картофеля усугубляется при уборке и хранении. Один клубень с черной ножкой может заразить множество дополнительных клубней, когда они проходят по конвейерным лентам комбайнов и штабелеукладчиков. Распространенной проблемой при хранении является гниение зараженных клубней. Поврежденные клубни особенно уязвимы для гниения пектолитическими бактериями.Наличие влаги на хранящихся клубнях также способствует развитию гниения, поскольку пленка воды, окружающая клубни, делает их анаэробными. Недостаток кислорода подавляет метаболическую активность клубней и не дает им развить нормальную реакцию резистентности.

Лечение болезней

Предпосевная

Было время, когда почти все клубни картофеля были заражены бактерией черной ножки. Сегодня это уже не так. Использование проростков культуры здоровых тканей для закладки семенного картофеля разорвало цикл переноса загрязнения клубней из года в год.Кроме того, за счет ограничения количества полевых поколений до 5–7 лет для производства отдельных партий семян после культуры ткани сокращается накопление загрязнения клубней. Таким образом, заболеваемость черной ножкой значительно ниже, чем до включения тканевых культур в программы выращивания семенного картофеля. Несмотря на то, что в некоторых географических районах снижение заболеваемости было очень значительным, заболевание остается важным в других, где используются аналогичные методы. Причина различий в заболеваемости, вероятно, связана с разнообразием бактерий, вызывающих черную ножку, и скоростью, с которой новые посевные материалы подвергаются воздействию инокулята черной ножки. Риск воздействия инокулята на новый посевной материал будет зависеть от конкретной агрономической практики и способности бактерии сохраняться вне картофеля в преобладающих климатических условиях в различных географических регионах.

При посадке

Во избежание развития черной ножки рекомендуется высаживать семена ограниченного поколения в хорошо дренированную почву после повышения температуры почвы выше 10°C/50°F. Кроме того, рекомендуется поле с низким содержанием азота и более высоким содержанием кальция и магния.Хотя не существует настоящих устойчивых коммерческих сортов, они различаются по переносимости. Таким образом, выбор более терпимого сорта помогает предотвратить развитие черной ножки.

В течение вегетационного периода

Если растение заражено, его нельзя спасти, и оно должно быть удалено. Таким образом, удаление пораженных черной ножкой растений, включая подземные части, снижает инокулят почвы, но является полезной практикой только в том случае, если приняты меры предосторожности для предотвращения контакта пораженной ткани с другими растениями в поле. Соблюдение надлежащих санитарных норм с помощью оборудования снижает распространение патогена из разных партий семян. Соединения меди можно использовать для предотвращения распространения возбудителя; однако существует риск того, что такие соединения нанесут ущерб окружающей среде и здоровью человека.

При уборке и хранении

Чтобы свести к минимуму гниение при хранении, важно избегать повреждения клубней картофеля во время сбора урожая. Удаление сгнившего картофеля до того, как его содержимое распределится по сортировочным линиям и бункерам, позволяет избежать распространения бактерий на другие клубни.Заживление ран важно на ранней стадии хранения картофеля, чтобы предотвратить развитие и распространение гнилей. Однако во время хранения картофель следует хранить при низкой температуре с достаточной аэрацией, чтобы обеспечить сухую среду и предотвратить конденсацию влаги на поверхности клубней.

Значение

Различные проявления черной ножки картофеля как болезни растений картофеля, гниение семян и гниль при хранении приводят к экономическим потерям. Хотя в настоящее время считается, что болезнь не имеет второстепенного значения в некоторых регионах выращивания картофеля, в других она продолжает оставаться основным фактором производства.Борьба с болезнью полностью зависит от методов управления сельскохозяйственными культурами, поскольку химические меры борьбы ограничены и дороги. Хотя сорта различаются по восприимчивости к болезням, ни один из них не обладает иммунитетом. Постоянное использование проростков и миниклубней, полученных из тканевых культур (выращенных из проростков в защищенной среде) для инициации семенного фонда в сочетании с ограниченным числом поколений полевых посевов, имеет важное значение для сведения к минимуму загрязнения семенного фонда и поддержания достигнутого уровня контроля.В тех районах, где эти меры не контролируют адекватно заболевание, необходимы дальнейшие исследования для определения источника, из которого загрязняется посадочный материал, не содержащий пектинолитиков.

Молекулярные исследования пектолитических бактерий, включая бактерию черной ножки, выявили множество интересных аспектов, касающихся генетики патогенности фитопатогенных бактерий. Теперь понятны части сложных механизмов генетического контроля, которые модулируют экспрессию и экскрецию пектолитических ферментов.Теперь понятно, как образование биопленок и связанные с ними сигнальные механизмы между бактериальными клетками и между бактериями и хозяином важны для колонизации, прогрессирования и выживания патогенов. Ожидается, что использование современных молекулярных методов и секвенированных геномов позволит узнать еще больше об этой группе патогенных для растений бактерий.

Ссылки

Багаи-Равари С., Х. Рахимян, М. Шамс-Бахш, Э. Лопес-Соланилья, М. Антунес-Ламас и П. Родригес-Паленсуэла. 2011. Характеристика видов Pectobacterium из Ирана с использованием биохимических и молекулярных методов.Европейский журнал патологии растений 129:413–425.

Чарковски, А., К. Бланко, Г. Кондемин, Т. Эксперт, Т. Франца, К. Хейс, Н. Хьювье-Кот-Патта, Э. Лопес Соланилья, Д. Лоу, Л. Молелеки, М. Пирхонен , А. Питман, Н. Перна, С. Ревершон, П. Родригес Паленсуэла, М. Сан-Франциско, И. Тот, С. Цуюму, Дж. ван дер Ваальс, Дж. ван дер Вольф, Ф. Ван Гийсегем, К. -ЧАС. Ян и И. Едидия. 2012. Роль систем секреции и малых молекул в патогенности мягкой гнили Enterobacteriaceae .Ежегодный обзор фитопатологии 50:425–449.

Чарковский О.А. 2015. Биология и контроль Pectobacterium в картофеле. Американский журнал исследований картофеля 92: 223-229.

Чанг С.Ю., Дж.Н. Гозер, X. Кай и С. Янски. 2013. Влияние длительного хранения на устойчивость картофеля к бактериальной мягкой гнили. Американский журнал исследований картофеля 90:351-356.

Чайковский Р., М.К.М. Перомбелон, Ж.А. ван Вин и Дж. М. ван дер Вольф. 2012. Борьба с черной ножкой и мягкой гнилью клубней картофеля, вызываемой видами Pectobacterium и Dickeya : обзор.Патология растений 60: 999–1013.

Чайковский Р., М.К.М. Перомбелон, С. Джафра, Э. Лойковска, М. Потрикус, Дж. М. ван дер Вольф и В. Следз. 2014. Обнаружение, идентификация и дифференциация видов Pectobacterium и Dickeya , вызывающих черную ножку картофеля и мягкую гниль клубней: обзор. Анналы прикладной биологии 166:18-38

Де Бур, С. Х., К. Ли и Л. Дж. Уорд. 2012. Pectobacterium spp. связанный с синдромом бактериальной стеблевой гнили картофеля в Канаде.Фитопатология 102:937-947.

Дуарте, В., С.Х. Де Бур, Л.Дж. Уорд и М.К. де Оливейра. 2004. Характеристика атипичных штаммов
Erwinia carotovora , вызывающих черную ножку картофеля в Бразилии. Журнал прикладной микробиологии 96: 535-545.

Ким, Х.-С., Б. Ма, Н.Т. Перна и А.О. Чарковский. 2009. Распространенность и вирулентность штаммов Pectobacterium с дефицитом системы секреции естественного типа III. Прикладная и экологическая микробиология 75:4539–4549.

Квасиборски А., С. Монди, А. Бери-Сиру и Д. Фор. 2013. Последовательность генома штамма Pectobacterium atrosepticum cfbp6276, вызывающего болезни черной ножки и мягкой гнили на растениях и клубнях картофеля. Genome Announc 1(3):e00374-13.http://dx.doi.org/10.1128/genomeA.00374-13

Frontiers | Картофельные чипсы «зебра»: обзор болезни, стратегии борьбы и перспективы

Введение

Картофель ( Solanum tuberosum L. ) являются основным продуктом питания в мире с многовековой историей, при этом общий мировой объем производства в 2018 году оценивается в 368,2 млн тонн (Faostat, 2020). Соединенные Штаты являются пятым по величине производителем картофеля после Китая, Индии, России и Украины (Faostat, 2020), а стоимость отрасли оценивается примерно в 3,5 миллиарда долларов (USDA, 2019; Faostat, 2020). Около трети картофеля, выращенного в США, предназначено для переработки, из которых 63–83% предназначены для жарки, измельчения и других фасованных продуктов, а остальная часть предназначена для свежего рынка, корма или семян (USDA, 2019).Одомашнивание картофеля привело к появлению сортов с пониженным содержанием гликоалкалоидов в клубнях, что сделало их более вкусными и привело к увеличению размера клубней и улучшению фиксации и транспорта углерода (Spooner et al., 2014; Machida-Hirano, 2015). Несколько выносливых сортов дикого картофеля также скрещивали с их культурными родственниками для повышения устойчивости к болезням, урожайности и качества в течение почти столетия (Jansky et al. , 2013). Это привело к весьма востребованным улучшениям, таким как улучшенное качество обработки для измельчения и жарки, а также устойчивость к некоторым вирусам и нематодам (Douches et al., 1996; Хирш и др., 2013; Бетке и др., 2017). Однако их низкое генетическое разнообразие привело к уязвимости к вредителям и болезням, а также к острой депрессии инбридинга.

Ранние сообщения о болезни зебровых чипсов

Заболевание Zebra Chip (ZC) впервые было зарегистрировано в 1994 г. в Сальтильо, Мексика, а затем в Южном Техасе, США, в 2000 г. (Munyaneza et al., 2007, 2009), Прихотливая бактерия, ограниченная флоэмой, Candidatus Liberibacter solanacearum ( C Lso), был идентифицирован как предполагаемый возбудитель. C Lso передается растениям лиственницей картофеля-томата Bactericera cockerelli Šulc (Munyaneza et al., 2007; Hansen et al., 2008; Liefting et al., 2009). Вегетативные симптомы болезни ZC на растениях включают хлороз листьев, обесцвечивание, скручивание или скручивание вверх, воздушные клубни, пролиферацию пазушных почек, задержку роста и, в конечном итоге, преждевременную гибель растений (рис. 1). C Lso-инфицированные клубни картофеля часто деформированы и плохого качества, с коллапсом столонов, побурением сосудистых колец и коричневыми пятнами.При обжаривании для измельчения коричневая окраска становится темнее, что делает чипсы горькими на вкус и непригодными для продажи (рис. 1D; Secor and Rivera-Varas, 2004). За пределами Северной Америки болезнь ZC также зарегистрирована в Южной Америке, Новой Зеландии и Австралии (Hansen et al., 2008; Liefting et al., 2008a, 2009; Teulon et al., 2009; Crosslin et al., 2012; Munyaneza). , 2012; Vereijssen et al., 2018).

Рис. 1. Характерные симптомы болезни зебровых чипов (ZC). Заражение Candidatus Liberibacter solanacearum ( C Lso) часто приводит к (A,B) хлорозу и скручиванию вверх/скручению листьев, низкорослым растениям, (C) росту воздушных клубней и (D) некротические пятна/потемнение клубней/чипсов и общее снижение товарного урожая.

Несмотря на относительно недавнее происхождение ZC, заражение картофеля лиственницей впервые было зарегистрировано у перца в Колорадо, США, и было описано как потенциальный вредитель в 1909 году Шульком (1909). Пагубное воздействие листоблошек не было полностью замечено до 1927 г., когда обширные вспышки того, что тогда было описано как болезнь желтого листобловидного (PY), привели к снижению урожайности картофеля от Юты до штатов Скалистых гор в Соединенных Штатах (Linford, 1928; Richards). , 1928). Описание листовых симптомов PY (Arslan et al., 1985) был очень похож на лиственные симптомы ZC (Pitman et al., 2011; рис. 1). Хотя изначально считалось, что PY связан с токсинами, выделяемыми при питании листоблошками, до сих пор никакие другие патогены или токсины не были связаны с PY. Следовательно, это привело к гипотезе, что PY может быть легким случаем ZC, когда C Lso присутствует в низких, неопределяемых количествах в пораженных растениях (Richards and Blood, 1933; Carter, 1939; Arslan et al., 1985; Munyaneza et al., 2011; Monger and Jeffries, 2018).

Тем не менее сегодня голубушка картофеля считается карантинным вредным организмом A1 ЕОКЗР (Европейская и средиземноморская организация по защите растений) и в качестве основного переносчика C Lso, вместе нанося значительный экономический ущерб (PM, 2017).

C Lso-Potato Psyllid Диапазон хозяев, передача и диагностика

Помимо болезни ZC на картофеле, C Lso может передаваться и инфицировать другие пасленовые культуры, такие как помидоры ( S.lycopersicum ), томатилло ( Physalis spp.), баклажаны ( S. melongena ), перец ( Capsicum spp.), табак ( Nicotiana tabacum ) и тамарилло ( Solanum 9 Hansen0 betaceum; ., 2008; Liifting et al., 2008b, 2009; Munyaneza et al., 2009, 2013, 2014; Aguilar et al., 2013). B. cockerelli является основным переносчиком C Lso, поражающим эти пасленовые культуры в Мексике, США, Центральной Америке (Гватемала, Гондурас и Никарагуа), Эквадоре, Канаде, Новой Зеландии и Австралии (Liefting et al., 2008а; Муньянеза и др., 2009 г.; Бекстин и др., 2013; Томас и др., 2018 г.; Каррильо и др., 2019 г.; Хенриксон и др., 2019). Немногие дикие виды пасленовых могут служить резервуаром как для B. cockerelli , так и для C Lso (Henne et al. , 2010; Murphy et al., 2014; Vereijssen et al., 2015). Исследования показали, что некоторые гаплотипы листоблошек (северо-западный гаплотип) могут зимовать на естественной растительности, такой как горько-сладкий паслен ( Solanum dulcamara L.; Murphy et al., 2013, 2014; Horton et al., 2015) и может вновь появиться летом, заражая сельскохозяйственные культуры. Точно так же в Новой Зеландии и C Lso, и B. cockerelli были обнаружены на горько-сладком паслене и терновнике ( Datura stramonium ; Vereijssen et al., 2015). Дальнейшие исследования по определению специфических гаплотипов C Lso, преобладающих у диких видов и сорных растений, позволят по-новому взглянуть на значение резервуарных хозяев в эпидемиологии C Lso и ZC (Bradshaw and Ramsay, 2005).

Питание инфицированными растениями является основным путем приобретения C Lso взрослыми листоблошками и нимфами (Buchman et al., 2011). После приобретения существует 2-недельный латентный период, прежде чем инфицированная листоблошка сможет передать бактерию в новые ткани растения (Sengoda et al. , 2013). При питании растением требуется всего 1 час, чтобы C Lso перенеслись в ткани растения (Buchman et al., 2011). Впоследствии, в зависимости от растения-хозяина, до появления симптомов ZC может пройти примерно 3 недели (Charkowski et al., 2020). Внутри зараженного растения C Lso распределяется неравномерно и поэтому присутствует в небольших количествах (Charkowski et al., 2020). Полимеразная цепная реакция (ПЦР) и/или количественная ПЦР является наиболее широко используемым диагностическим подходом для обнаружения C Lso как в растениях-хозяевах, так и в листоблошках, и может использоваться для различения различных гаплотипов (Hansen et al., 2008; Secor et al., 2009; Swisher et al., 2012; Anantakrishnan et al., 2013; Beard and Scott, 2013; Beard et al., 2013; Контрерас-Рендон и др., 2020). Другие новые технологии, такие как спектроскопия комбинационного рассеяния, также изучаются для выявления болезни ZC, что позволяет проводить быструю, неинвазивную диагностику в полевых условиях (Farber et al. , 2021).

C Lso Гаплотипы и разнообразие

До сих пор сообщалось о двенадцати различных гаплотипах C Lso [A, B, C, D, F, G, H, H (Con), U, Cras1 и Cras2] (Wen et al., 2009; Munyaneza et al. ., 2010; Nelson et al., 2011, 2013; Teresani et al., 2014; Хаапалайнен и др., 2018, 2020; Маук и др., 2019 г.; Свишер Гримм и Гарчински, 2019 г.; Контрерас-Рендон и др., 2020 г.; Самнер-Калкун и др., 2020). В дополнение к B. cockerelli другие родственники в семействе Triozidae (Hemiptera) передают определенные гаплотипы C Lso. Например, гаплотип C, обнаруженный в моркови, является переносчиком Trioza apicalis Förster (Munyaneza et al., 2010). Гаплотипы D и E передаются переносчиком листоблошки моркови, Bactericera trigonica Hodkinson (Nelson et al., 2011; Swisher и др., 2014; Борхес и др., 2017; Чарковски и др., 2020). В то время как гаплотип U C Lso, идентифицированный в Северной Европе, связан с Trioza urticae psyllid (Haapalainen et al. , 2018). В Северной и Южной Америке болезнь ZC в первую очередь связана с гаплотипами A, B и F. C Lso A и B передаются B. cockerelli , в то время как вектор гаплотипа F до сих пор неизвестен (Hansen et al., 2008; Wen et al., 2009; Nelson et al., 2011; Swisher Grimm and Garczynski, 2019).В Новой Зеландии и на острове Норфолк (Австралия) гаплотип А C Lso, переносимый взаимодействием B. cockerelli , считается преобладающим гаплотипом, вызывающим болезнь ZC (Liefting et al., 2008a; Nelson et al., 2011; Thomas et al. ., 2018). В совокупности C Lso гаплотипы A и B являются наиболее преобладающими во всем мире, в Северной и Южной Америке, Новой Зеландии и Австралии, и связаны с болезнью ZC у картофеля (Rosson et al., 2006; Liefting et al. ., 2008а; Нельсон и др., 2011; Томас и др., 2018 г.; Савари и др., 2019; Дельгадо и др., 2020).

Исследования с C Lso гаплотипами A и B показали, что оба гаплотипа могут заражать растения либо по отдельности, либо в виде коинфекций (Harrison et al. , 2019). Распределение гаплотипов и результирующее влияние на тяжесть заболевания при одиночной или сочетанной инфекции также изучались на томатах и ​​картофеле (Mendoza-Herrera et al., 2018; Harrison et al., 2019). Например, заражение гаплотипом В губительно для растений томатов, поскольку они обычно погибают до развития плодов, тогда как растения могут оставаться живыми с симптомами при заражении гаплотипом А (Mendoza-Herrera et al., 2018). У картофеля гаплотип B вызывает более сильные симптомы ZC в клубнях, чем гаплотип A (Grimm et al., 2018), а инфекции с двойным гаплотипом AB обычно приводят к более серьезным симптомам, чем инфекции только с гаплотипом B (Hernández-Deheza et al., 2018). ; Харрисон и др., 2019). Интересно, что гаплотип B, по-видимому, снижает выживаемость нимф листоблошки по сравнению с носителями гаплотипа A (Yao et al., 2016).

ZC Control: Мониторинг лиственниц, химическая, биологическая и комплексная борьба с вредителями

В настоящее время основной подход к управлению ZC заключается в контроле популяций листоблошек-переносчиков. Компоненты комплексной борьбы с вредителями (IPM), такие как стратегии химической, культурной и биологической борьбы, были реализованы во всем мире (Vereijssen et al., 2018). Обширный мониторинг и обнаружение популяции листоблошек также используются для определения перемещений листоблошек (Butler and Trumble, 2012). Данные, собранные при мониторинге листоблошек в метловых сетях, коррелируют с болезнями, переносимыми листоблошками, на томатных полях (Pletsch, 1947; Cranshaw, 1994). Как правило, заражение лиственницами начинается по периметру поля, перемещаясь к центру по мере увеличения их популяции (Wallis, 1955; Cranshaw, 1994).Доказательства заражения лиственницей также можно получить при осмотре листьев, хотя это утомительно и требует много времени (Pletsch, 1947; Goolsby et al., 2007). В то время как другие исследования показали, что липкие ловушки полезны для наблюдения за популяциями листоблошек даже при низкой плотности (Goolsby et al., 2007).

Для борьбы с листоблошками в нескольких регионах основным методом действий было использование пестицидов. Типичные рекомендации по борьбе с вредителями листоблошки картофеля включают в себя применение неоникотиноидов, таких как имидаклоприд и тиаметоксам, при посадке в качестве обработки семян с последующей внекорневой обработкой для борьбы с взрослыми особями и нимфами (Prager et al., 2013; Верейссен и др., 2015; Нуньес и др., 2019). К сожалению, чрезмерное использование пестицидов привело к возникновению устойчивости к неоникотиноидам на юго-западе США, в Южном Техасе и на севере Мексики (Prager et al., 2013; Chávez et al., 2015; Szczepaniec et al., 2019). Таким образом, зависимость от пестицидов является экономически и экологически неустойчивой.

Также были протестированы некоторые культуральные методы борьбы с листоблошками. Например, путем использования сертифицированных чистых семян и посадки растений, не являющихся хозяевами, в севооборотах для поддержания свободных от болезней площадей посадки (Vereijssen et al., 2018). В более теплом климате, например на юге США, сроки посадки можно изменить, чтобы отсрочить воздействие листоблошек на картофель (Guenthner et al. , 2012). Немногие органические фермеры также добились определенного успеха, используя физические барьеры, такие как сетчатые покрытия, для снижения заражения листоблошками (Merfield et al., 2015).

Наконец, также применялись стратегии биоконтроля. Естественные враги листоблошек, такие как эктопаразитоиды, кокцинеллиды и энтомопатогенные грибы, продемонстрировали многообещающие эффекты против листоблошек, паразитируя на них на разных стадиях жизни, в тепличных и лабораторных исследованиях (Al-Jabr, 1999; MacDonald et al., 2010; Лейси и др., 2011 г.; Уокер и др., 2011 г.; Моклин и Станнард, 2013 г.; Рохас и др., 2015). Использование таких естественных врагов, как агенты биоконтроля, в тепличных производственных системах (например, помидоры) или в полевых условиях (например, картофель) может позволить выращивать более ранний урожай и снизить зависимость от инсектицидов.

Устойчивость растений-хозяев и стратегии селекции устойчивости к ZC

Были предприняты усилия по изучению устойчивости растений-хозяев к выведению устойчивых к ZC сортов картофеля. Растения используют различные механизмы для защиты от патогенов и насекомых. Некоторые механизмы устойчивости растения-хозяина являются конститутивными, например, физические или предварительно сформированные структурные барьеры и высвобождение химических веществ, которые нарушают передачу патогенов, питание насекомых и откладывание яиц. Другие защитные механизмы растений, такие как выброс летучих соединений или активация генов устойчивости, также могут запускаться в ответ на воздействие вредителя или патогена (Dicke and Van Poecke, 2002; War et al., 2012). Механизмы устойчивости хозяина к вредителям также можно разделить на антиксеноз и антибиоз.Как правило, антиксеноз относится к сдерживающему эффекту, который растения могут оказывать на поведение насекомых, при этом антибиоз влияет на их жизненный цикл и размножение (Painter, 1951; Kogan and Ortman, 1978; Smith, 2005).

В случае ЗК было выявлено, что несколько сортов картофеля и гибридов картофеля обладают определенной устойчивостью к ЗК. У некоторых сортов толерантность была связана с антиксенотическим действием железистых трихом (Butler et al., 2011; Diaz-Montano et al., 2014; Rubio-Covarrubias et al., 2017). В то время как несколько разновидностей, по-видимому, имеют генетическую основу для устойчивости к C Lso в дополнение к влиянию на поведение листоблошек (Rashidi et al., 2017; Fife et al., 2020). Недавно было выявлено, что несколько диких родственников томата, S. pennelli и S. corneliomulleri , обладают устойчивостью к B. cockerelli (Avila et al., 2019), с несколькими связанными локусами количественных признаков (QTL). со смертностью насекомых и меньшей плодовитостью у S. habrochaites .Такие QTL у диких видов могут быть ценным источником для выведения устойчивости к сортам, однако их сложное наследование, способы действия и взаимодействия патоген-вектор-хозяин требуют дальнейшей характеристики.

Будущие перспективы и стратегии ZC Resistance

В прошлом отсутствие передовых геномных инструментов в сочетании с экономической эффективностью стратегий химической борьбы приводило к тому, что в большей степени полагались на пестициды, а не на разработку новых сортов, устойчивых к вредителям/патогенам (Rowe, 1992; Spooner and Bamberg, 1994). ).Однако недавние достижения в области геномики и генетических ресурсов (Varshney et al., 2005; Broekgaarden et al., 2011), в том числе для картофеля, должны помочь в определении желательных признаков, аллелей и развитии маркеров для разработки новых сортов, устойчивых к ZC. Например, доступность эталонной последовательности генома картофеля, открытие SNP в зародышевой плазме элитного североамериканского картофеля и разработка массива картофеля Infinium 8303 помогли идентифицировать гены, связанные с улучшенными агрономическими признаками (Hamilton et al., 2011; Масса и др., 2011; Фелчер и др., 2012). Ресурсы также позволили использовать селекцию с помощью маркеров (MAS), которая помогает идентифицировать маркеры, тесно связанные с целевым локусом, вместо того, чтобы полагаться только на фенотипический отбор при отборе для скрещивания. Таким образом, MAS можно использовать для ускорения интрогрессии желаемых признаков толерантности к ZC от различных селекционных клонов картофеля или диких видов в развитие сорта. Несколько исследований показали потенциал улучшения свойств картофеля за счет увеличения гетерозиготности и генетического разнообразия родительских клонов (Mendoza and Haynes, 1974; Bradshaw and Ramsay, 2005; Jansky and Peloquin, 2006).Таким образом, необходимо будет уделять больше внимания идентификации и интрогрессии аллелей из разнообразного пула генетических ресурсов, включая дикие виды, местные сорта и культурный картофель (Bethke et al., 2019).

Интрогрессия желательных признаков от родственных или отдаленных видов в культурный картофель с использованием генной инженерии (ГМ) может быть жизнеспособной альтернативой ускорению развития сорта и снижению интрогрессии нежелательного генетического материала или признаков (Halterman et al., 2016). Несколько примеров ГМ картофеля, получившего одобрение регулирующих органов США, включают картофель «NewLeaf» Bt с устойчивостью к колорадскому жуку ( Leptinotarsa ​​decemlineata ), картофель «Innate TM » с устойчивостью к грибковым заболеваниям (фитофторозу) и образованию акриламида. (Хальтерман и др., 2016). Несмотря на значительные преимущества ГМ-культур, затраты, связанные с НИОКР и одобрением регулирующими органами, огромны и требуют инвестиций частного сектора или государственно-частного партнерства. Кроме того, продукты GE сталкиваются с маркетинговыми препятствиями из-за общественного скептицизма (Halterman et al., 2016).

Отдельные признаки также можно модифицировать/вводить с помощью технологий редактирования генома, таких как TALEN или CRISPR-Cas9, без введения новой чужеродной ДНК (Wolt et al., 2016; Hameed et al., 2018).Производные растительные продукты потенциально подвергаются меньшему контролю со стороны регулирующих органов и меньшему бремени одобрения. Например, регулирующий орган США (USDA APHIS) определил, что несколько растений картофеля без трансгенов с отредактированным геномом, обладающих устойчивостью к болезням и другими превосходными агрономическими признаками, не будут считаться регулируемыми в соответствии с частью 340 7 CFR (Wolt et al. , 2016). ). Хотя это не исключает регулирования со стороны других агентств по всему миру, тем не менее, это является значительным преимуществом, когда речь идет о коммерциализации.

Заключение

Со времени своего первого сообщения в 1994 г. ZC-болезнь в настоящее время распространена в нескольких регионах мира, где выращивают картофель. Предполагаемый возбудитель, C Lso, может также заражать другие экономически значимые Solanaceae сельскохозяйственные культуры, тем самым создавая еще большую угрозу для сельскохозяйственной отрасли. Стратегии IPM (химический, культуральный и биологический контроль) были реализованы для управления популяцией переносчиков листоблошки и ограничения болезни ZC. Однако нам по-прежнему нужны долгосрочные решения.Последние разработки в области генетических ресурсов картофеля и технологий улучшения урожая могут быть дополнительно использованы для создания новых сортов картофеля с генетической устойчивостью к листоблошке и/или C Lso. В сочетании с практикой IPM в будущем можно будет использовать устойчивые или толерантные к ZC сорта для эффективной борьбы с болезнью ZC.

Вклад авторов

км руководили исследованием. Все остальные внесли свой вклад в подготовку и редактирование обзора.

Финансирование

Это исследование было поддержано фондами Техасского гранта A&M AgriLife Research для изучения болезней, переносимых насекомыми (124190-96210), USDA-NIFA-AFRI (2018-70016-28198; HATCH 1023984) и Фонда пищевых и сельскохозяйственных исследований в номинации «Новый инноватор». (534299) до КМ.

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Сноски

Каталожные номера

Агилар Э., Сенгода В., Бекстин Б., Маккью К. и Муньянеза Дж. (2013). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum» на табаке в Гондурасе. Завод Дис. 97, 1376–1376.doi: 10.1094/pdis-04-13-0453-pdn

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Аль-Джабр, AM (1999). Комплексная борьба с вредителями томата/картофеля Psyllid, Paratrioza Cockerelli (Sulc) (Homoptera: Psyllidae) с акцентом на его важность для томатов, выращиваемых в теплицах. США: Университет штата Колорадо.

Академия Google

Анантакришнан Г., Чоудхари Н., Рой А., Сенгода В., Постникова Э., Хартунг Дж. и соавт.(2013). Разработка праймеров и зондов для родо- и видовоспецифического обнаружения « видов Candidatus Liberibacter» с помощью ПЦР в реальном времени. Завод Дис. 97, 1235–1243. doi: 10.1094/pdis-12-12-1174-re

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Арслан, А., Бесси, П.М., Мацуда, К., и Обкер, Н.Ф. (1985). Физиологическое воздействие листоблошки ( Paratrioza cockerelli ) на картофель. утра. Картофель J. 62, 9–22. дои: 10.1007/bf02871295

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Авила, К.А., Маркони, Т.Г., Вилория, З., Курпис, Дж., и Дель Рио, С.Ю. (2019). Bactericera cockerelli резистентность в диком томате Solanum habrochaites является полигенной и подвержена влиянию присутствия Candidatus Liberibacter solanacearum. наук. Респ. 9, 1–11.

Академия Google

Берд, С. С., Питман, А. Р., Крабергер, С., и Скотт, И. А.В. (2013). SYBR Green количественная ПЦР в реальном времени для специфического обнаружения и количественного определения « Candidatus Liberibacter solanacearum» в полевых образцах из Новой Зеландии. евро. Дж. Плант Патол. 136, 203–215. doi: 10.1007/s10658-012-0156-5

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Бирд, С.С., и Скотт, И.А. (2013). Экспресс-метод обнаружения и количественного определения переносимых переносчиками бактерий ‘ Candidatus Liberibacter solanacearum’ в лиственнице томата и картофеля, Bactericera cockerelli . Энтомол. Эксп. заявл. 147, 196–200. doi: 10.1111/eea.12056

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Бетке, П. К., Халтерман, Д. А., и Янски, С. (2017). Становимся ли мы лучше в использовании диких видов картофеля в свете новых инструментов? Растениеводство. 57, 1241–1258. doi: 10.2135/cropsci2016.10.0889

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Бетке, П. К., Халтерман, Д. А., и Янски, С. Х. (2019). Улучшение зародышевой плазмы картофеля вступает в эру геномики. Агрон. Дж. 9:575. doi: 10.3390/агрономия

75

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Бекстин Б., Агилар Э., Руэда А., Касерес О., Сенгода В., Маккью К. и соавт. (2013). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum» на помидорах в Сальвадоре. Завод Дис. 97, 1245–1245. doi: 10.1094/pdis-03-13-0248-pdn

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Борхес К. М., Купер В.Р., Гарчински С.Ф., Тинакаран Дж., Дженсен А.С., Хортон Д.Р. и соавт. (2017). « Candidatus Liberibacter solanacearum», связанный с лиственницей, Bactericera maculipennis (Hemiptera: Triozidae). Окружающая среда. Энтомол. 46, 210–216.

Академия Google

Брэдшоу, Дж. Э., и Рамзи, Г. (2005). Использование коллекции картофеля Содружества в селекции картофеля. Euphytica 146, 9–19. doi: 10.1007/s10681-005-3881-4

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Брокгорден, К., Snoeren, T.A., Dicke, M., and Vosman, B. (2011). Использование естественной изменчивости для выявления генов устойчивости к насекомым. Биотехнология растений. Дж. 9, 819–825. doi: 10.1111/j.1467-7652.2011.00635.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Бухман, Дж. Л., Хейлман, Б. Э., и Муньянеза, Дж. Э. (2011). Влияние плотности либерибактерий Bactericera cockerelli ( Hemiptera: Triozidae ) на заболеваемость картофельной болезнью зебра, урожайность картофеля и качество обработки клубней. Ж. эконом. Энтомол. 104, 1783–1792 гг. дои: 10.1603/ec11146

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Butler, C.D., Gonzalez, B., Manjunath, K.L., Lee, R.F., Novy, R.G., Miller, J.C., et al. (2011). Поведенческие реакции взрослых листоблошек картофеля Bactericera cockerelli (Hemiptera: Triozidae) на зародышевую плазму картофеля и передачу Candidatus Liberibacter psyllaurous. J. Защита растений. 30, 1233–1238. doi: 10.1016/j.cropro.2011.05.006

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Батлер, К.Д., и Трамбл, Дж.Т. (2012). Картофельная листоблошка, Bactericera cockerelli (Sulc) (Hemiptera: Triozidae): история жизни, связь с болезнями растений и стратегии управления. Терр. Членистоногое. Ред. 5, 87–111. дои: 10.1163/187498312×634266

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Каррильо, К.С., Фу, З., и Буркхардт, Д. (2019). Первая запись о томатно-картофельной лиственнице Bactericera cockerelli из Южной Америки. Бык. инсектол. 72, 85–91.

Академия Google

Чарковски, А., Шарма, К., Паркер, М.Л., Секор, Г.А., и Эльфинстон, Дж. (2020). «Бактериальные болезни картофеля» в The Potato Crop. изд. Х. Кампос и О. Ортис. (Германия: Springer). 351–388. дои: 10.1007/978-3-030-28683-5_10

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Чавес, Э. К., Баутиста, О. Х., Флорес, Дж. Л., Урибе, Л. А., и Фуэнтес, Ю. М. О. (2015). Коэффициенты устойчивости к инсектицидам трех популяций Bactericera cockerelli ( Hemiptera : Psylloidea : Triozidae ) в регионах северной Мексики. Флорида Энтомол. 98, 950–953. дои: 10.1653/024.098.0322

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Контрерас-Рендон, А., Санчес-Пале, Дж. Р., Фуэнтес-Арагон, Д., Аланис-Мартинес, И., и Сильва-Рохас, Х. В. (2020). Обычная ПЦР и КПЦР выявили наличие Candidatus Liberibacter solanacearum’гаплотипов A и B в растениях Physalis philadelphica , семенах и Bactericera cockerelli psyllids с назначением нового гаплотипа H в Convolvulaceae. Антони Ван Левенгук 113, 533–551. doi: 10.1007/s10482-019-01362-9

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Крэншоу, В. (1994). «Картофельная (томатная) листоблошка, Paratrioza cockerelli (Sulc), как вредитель картофеля» в «Достижения в области биологии и борьбы с вредителями картофеля». изд. Цендер, М.Л. Пауэлсон, Р.К. Ханссон и К.В. Раман. (Сент-Пол, Миннесота: APS Press). 83–95.

Академия Google

Кросслин, Дж., Хэмм, П., Эггерс Дж., Рондон С., Сенгода В. и Муньянеза Дж. (2012). Первое сообщение о болезни зебры и « Candidatus Liberibacter solanacearum » на картофеле в штатах Орегон и Вашингтон. Завод Дис. 96, 452. doi: 10.1094/pdis-10-11-0894

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дельгадо, Л., Шустер, М., и Тореро, М. (2020). Количественные и качественные потери продовольствия в цепочке создания стоимости: сравнительный анализ. Продовольственная политика 98:101958. doi: 10.1016/j.foodpol.2020.101958

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Диас-Монтано, Дж., Виндиола, Б.Г., Дрю, Н., Нови, Р.Г., Миллер, Дж.К., и Трамбл, Дж.Т. (2014). Устойчивость отдельных генотипов картофеля к листоблошке картофеля ( Hemiptera : Triozidae ). утра. Дж. Пот. Рез. 91, 363–367. doi: 10.1007/s12230-013-9356-6

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дике, М., и Ван Поке, Р. М. (2002). Передача сигналов при взаимодействии растений и насекомых: передача сигналов при прямой и косвенной защите растений. J. Сигнальный преобразователь. 289:316.

Академия Google

Душес Д., Маас Д., Ястржебски К. и Чейз Р. (1996). Оценка прогресса селекции картофеля в США за последнее столетие. Растениеводство. 36, 1544–1552. doi: 10.2135/cropsci1996.0011183x003600060024x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Фарбер, К., Санчес, Л. , Пант, С., Шойринг, Д., Валес, И., Мандади, К., и соавт. (2021). Возможности рамановской спектроскопии с пространственным смещением для обнаружения болезней картофеля, вызванных чипсами зебры и картофельным вирусом Y ( Solanum tuberosum ). АКС Сельскохозяйственный. науч. Технол. 1, 211–221. doi: 10.1021/acsagscitech.1c00024

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Felcher, K.J., Coombs, J.J., Massa, A.N., Hansey, C.N., Hamilton, J.P., Veilleux, R.E., et al. (2012). Интеграция двух диплоидных карт сцепления картофеля с последовательностью генома картофеля. PLoS One 7:e36347. doi: 10.1371/journal.pone.0036347

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Файф, А. Н., Cruzado, K., Rashed, A., Novy, R.G., and Wenninger, EJ (2020). Potato Psyllid ( Hemiptera : Triozidae ) Поведение на трех генотипах картофеля с толерантностью к « Candidatus Liberibacter solanacearum». J. Наука о насекомых. 20:15.

Академия Google

Гулсби, Дж. А., Адамчик, Дж., Бекстин, Б., Лин, Д., Муньянеза, Дж. Э., и Бестер, Г. (2007). Разработка программы IPM по борьбе с лиственницей картофеля с целью снижения заболеваемости картофеля болезнью зебра. Субтроп. Растениевод. 59, 85–94.

Академия Google

Гримм, К.Д.С., Мустафа, Т., Купер, В.Р., и Муньянеза, Дж.Э. (2018). Роль гаплотипов Candidatus Liberibacter solanacearum и Bactericera cockerelli в заболеваемости зебровыми чипсами и тяжести симптомов. утра. Дж. Картофель Рез. 95, 709–719. doi: 10.1007/s12230-018-9678-5

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гентнер, Дж., Гулсби, Дж., и Гринуэй, Г.(2012). Использование и стоимость инсектицидов для борьбы с листоблошками и зеброй на картофеле. Юго-запад. Энтомол. 37, 263–268. дои: 10.3958/059.037.0302

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хаапалайнен М. , Латвала С., Викстрем А., Ван Дж., Пирхонен М. и Ниссинен А. И. (2020). Новый гаплотип « Candidatus Liberibacter solanacearum», обнаруженный у растений семейств Apiaceae и Polygonaceae. евро. Дж. Плант Патол. 156, 413–423.doi: 10.1007/s10658-019-01890-0

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хаапалайнен М., Ван Дж., Латвала С., Лехтонен М. Т., Пирхонен М. и Ниссинен А. (2018). Генетическая вариация гаплотипа C Candidatus Liberibacter solanacearum и идентификация нового гаплотипа от Trioza urticae и крапивы двудомной. Фитопатология 108, 925–934. doi: 10.1094/фито-12-17-0410-р

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Холтерман, Д., Гентнер Дж., Коллиндж С., Батлер Н. и Душес Д. (2016). Биотехнологический картофель в 21 веке: 20 лет со дня появления первого биотехнологического картофеля. утра. Дж. Пот. Рез. 93, 1–20. doi: 10.1007/s12230-015-9485-1

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хамид А. , Заиди С. С.-Э.-А., Шакир С. и Мансур С. (2018). Применение новых селекционных технологий для улучшения картофеля. Перед. Растениевод. 9:925. doi: 10.3389/fpls.2018.00925

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Гамильтон, Дж.P., Hansey, C.N., Whitty, B.R., Stoffel, K., Massa, A.N., Van Deynze, A., et al. (2011). Открытие однонуклеотидного полиморфизма в гермоплазме элитного североамериканского картофеля. BMC Геном. 12:302. дои: 10.1186/1471-2164-12-302

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Хансен А.К., Трамбл Дж., Стаутхамер Р. и Пейн Т. (2008). Новый вид хуанлунбинов, « Candidatus Liberibacter psyllaurous», который, как было установлено, заражает помидоры и картофель, передается псиллидом Bactericera cockerelli (Sulc). Заяв. Окружающая среда. микробиол. 74, 5862–5865. doi: 10.1128/aem.01268-08

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Harrison, K. , Tamborindeguy, C., Scheuring, D.C., Herrera, A.M., Silva, A., Badillo-Vargas, I.E., et al. (2019). Различия в серьезности Zebra Chip между гаплотипами Candidatus Liberibacter solanacearum в Техасе. утра. Дж. Картофель Рез. 96, 86–93. doi: 10.1007/s12230-018-9692-7

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хенне, Д., Паецольд, Л., Воркне, Ф., и Раш, К. (2010). «Оценка холодоустойчивости листоблошки картофеля, выживаемости при зимовке, отбор проб из липкой ловушки и воздействия либерибактерий на альтернативные растения-хозяева листоблошки картофеля» в Proceedings 10th Annual Zebra Chip Reporting Session. (Даллас: аэропорт Hyatt DFW).

Академия Google

Хенриксон А., Калищук М., Линн Дж., Меерс С., Джонсон Д. и Кавчук Л. (2019). Первое сообщение о чипсах зебры на картофеле в Канаде. Завод Дис. 103, 1016–1016. doi: 10.1094/pdis-09-18-1576-pdn

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Эрнандес-Дехеса, М. Г., Рохас-Мартинес, Р. И., Ривера-Пенья, А., Завалета-Мехия, Э., Очоа-Мартинес, Д. Л., и Каррильо-Салазар, А. (2018). Устойчивость картофеля к двум гаплотипам ‘ Candidatus Liberibacter solanacearum’. Завод Патол. J. 100, 191–196. doi: 10.1007/s42161-018-0046-6

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хирш, К.Н., Хирш, С.Д., Фелчер, К., Кумбс, Дж., Зарка, Д., Ван Дейнзе, А., и соавт. (2013). Ретроспектива селекции североамериканского картофеля ( Solanum tuberosum L.) в 20-м и 21-м веках. G3 3, 1003–13. дои: 10.1534/g3.113.005595

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Horton, D.R., Cooper, W.R., Munyaneza, J.E., Swisher, K.D., Echegaray, E.R., Murphy, A.F., et al. (2015). Новая проблема и старые вопросы: листоблошка картофеля на северо-западе Тихого океана. утра. Энтомол. 61, 234–244. doi: 10.1093/ae/tmv047

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Янски С. , Демпевольф Х., Камадро Э. Л., Саймон Р., Зимноч-Гузовска Э., Бизоньин Д. и соавт. (2013). Случай сохранения и использования диких родственников урожая в картофеле. Растениеводство. 53, 746–754. doi: 10.2135/cropsci2012.11.0627

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Янский, С. Х., и Пелокин, С. Дж. (2006). Преимущества диплоидного вида Solanum перед культивируемыми диплоидными родственниками в программах селекции картофеля. Жен. Ресурс. Кроп Эвол. 53, 669–674. doi: 10.1007/s10722-004-2949-7

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Коган М. и Ортман Э. Ф. (1978). Антиксеноз — новый термин, предложенный Пейнтером для определения «непредпочтительной» модальности резистентности. Бык. Экол. соц. Являюсь. 24, 175–176. doi: 10.1093/besa/24.2.175

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Лейси, Л., Лю, Т.-Х., Бухман, Дж., Муньянеза, Дж., Гулсби, Дж., и Хортон, Д. (2011).Энтомопатогенные грибы (Hypocreales) для борьбы с лиственницей картофеля, Bactericera cockerelli (Šulc) ( Hemiptera : Triozidae ) в районе, эндемичном по болезни картофеля, вызванной чипсами зебры. биол. Контроль 56, 271–278. doi: 10.1016/j.biocontrol.2010.11.012

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Лифтинг Л., Перес-Эгускиса З., Кловер Г. и Андерсон Дж. (2008a). Новый вид Candidatus Liberibacter в Solanum tuberosum в Новой Зеландии. Завод Дис. 92, 1474–1474. doi: 10.1094/pdis-92-10-1474a

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лифтинг Л., Уорд Л., Шиллер Дж. и Кловер Г. (2008b). Новый вид Candidatus Liberibacter в Solanum betaceum (тамарилло) и Physalis peruviana (капский крыжовник) в Новой Зеландии. Завод Дис. 92, 1588–1588. doi: 10.1094/pdis-92-11-1588b

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лифтинг, Л. В., Сазерленд П.В., Уорд Л.И., Пэйс К.Л., Вейр Б.С. и Клевер Г.Р. (2009). Новый вид ‘ Candidatus Liberibacter’, ассоциированный с болезнями пасленовых культур. Завод Дис. 93, 208–214. doi: 10.1094/pdis-93-3-0208

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Линфорд, М. (1928). Psyllid-желтые (причина не установлена). Завод Дис. Респ. Доп. 59, 95–99.

Академия Google

Макдональд, Ф., Уокер Г., Ларсен Н. и Уоллес А. (2010). Встречающиеся в природе хищники Bactericera cockerelli в картофеле. NZ Plant Prot. 63, 275–275. doi: 10.30843/nzpp.2010.63.6583

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Масса, А. Н., Чайлдс, К. Л., Лин, Х., Брайан, Г. Дж., Джулиано, Г., и Бьюэлл, К. Р. (2011). Транскриптом эталонного генома картофеля Solanum tuberosum Группа Phureja клон DM1-3 516R44. PLoS One 6:e26801.doi: 10.1371/journal.pone.0026801

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Мохлайн, Н. , и Станнард, К. (2013). Оценка отдельных энтомопатогенных грибов и биоинсектицидов против Bactericera cockerelli (Hemiptera). NZ Plant Prot. 66, 324–332. doi: 10.30843/nzpp.2013.66.5707

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Маук, К. Э., Сан, П., Медури, В. Р., и Хансен, А. К. (2019). Нью Ка. Гаплотип Liberibacter psyllaurous, возрожденный из 49-летнего экземпляра Solanum umbelliferum : родной хозяин переносчика psyllid. наук. Респ. 9, 1–13.

Академия Google

Мендоса-Эррера, А., Леви, Дж., Харрисон, К., Яо, Дж., Ибанез, Ф., и Тамбориндеги, К. (2018). Заражение Candidatus Liberibacter solanacearum’гаплотипами A и B в Solanum lycopersicum ‘Moneymaker’. Завод Дис. 102, 2009–2015 гг. doi: 10.1094/pdis-12-17-1982-re

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Мерфилд, К., Гири, И., Хейл, Р.и Ходж, С. (2015). Полевая оценка эффективности сетчатых покрытий для защиты картофеля от листоблошки томата. NZ J. Crop Hortic. науч. 43, 123–133. дои: 10.1080/01140671.2015.1015576

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Монгер, В. А., и Джеффрис, К. Дж. (2018). Обзор « Candidatus Liberibacter solanacearum» в исторических семенах из коллекций моркови и родственных Apiaceae видов. евро.Дж. Плант Патол. 150, 803–815. doi: 10.1007/s10658-017-1322-6

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Муньянеза Дж., Бухман Дж., Хейлман Б., Сенгода В. и Хенне Д. (2011). «Влияние чипсов зебры и картофельной листоблошки на качество семян картофеля» в 11-й Ежегодной отчетной сессии по чипсам зебры. (Техас: Сан-Антонио) 6–9.

Академия Google

Муньянеза, Дж., Кросслин, Дж., и Аптон, Дж. (2007). Ассоциация Bactericera cockerelli ( Homoptera : Psyllidae ) с «чипом-зеброй», новым заболеванием картофеля на юго-западе США и в Мексике. Ж. эконом. Энтомол. 100, 656–663. doi: 10.1093/jee/100.3.656

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Муньянеза Дж., Фишер Т., Сенгода В., Гарчински С., Ниссинен А. и Лемметти А. (2010). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum», связанном с пораженной листоверткой морковью в Европе. Завод Дис. 94:639. doi: 10.1094/pdis-94-5-0639a

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Муньянеза, Дж., Сенгода В., Агилар Э., Бекстин Б. и Макью К. (2013). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum», поражающем баклажаны в Гондурасе. Завод Дис. 97, 1654–1654. doi: 10.1094/pdis-06-13-0641-pdn

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Муньянеза Дж., Сенгода В., Агилар Э., Бекстин Б. и Макью К. (2014). Первое сообщение о Candidatus Liberibacter solanacearum на перце в Гондурасе. Завод Дис. 98, 154–154.doi: 10.1094/pdis-06-13-0598-pdn

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Муньянеза Дж. , Сенгода В., Кросслин Дж., Гарсон-Тизнадо Дж. и Карденас-Валенсуэла О. (2009). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum» на растениях томата в Мексике. Завод Дис. 93, 1076–1076. doi: 10.1094/pdis-93-10-1076a

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Муньянеза, Дж. Э. (2012). Зебровая болезнь картофеля: биология, эпидемиология и лечение. утра. Дж. Пот. Рез. 89, 329–350. doi: 10.1007/s12230-012-9262-3

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Мерфи А., Кейтинг Р., Гойер А., Хэмм П. и Рондон С. (2014). Первое сообщение о естественном заражении ‘ Candidatus Liberibacter solanacearum’ в горько-сладком паслене ( Solanum dulcamara ) в бассейне реки Колумбия в Восточном Орегоне. Завод Дис. 98, 1425–1425. doi: 10.1094/pdis-05-14-0497-pdn

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Мерфи, А.Ф., Рондон С.И. и Дженсен А.С. (2013). Первое сообщение о листоблошках картофеля, Bactericera cockerelli , зимующих на северо-западе Тихого океана. утра. Дж. Пот. Рез. 90, 294–296. doi: 10.1007/s12230-012-9281-0

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Нельсон, В. Р., Фишер, Т. В., и Муньянеза, Дж. Э. (2011). Гаплотипы « Candidatus Liberibacter solanacearum» предполагают давнее разделение. евро. Дж. Плант Патол. 130, 5–12.doi: 10.1007/s10658-010-9737-3

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Нельсон, В. Р., Сенгода, В. Г., Альфаро-Фернандес, А. О., Фонт, М. И., Кросслин, Дж. М., и Муньянеза, Дж. Э. (2013). Новый гаплотип « Candidatus Liberibacter solanacearum» идентифицирован в Средиземноморском регионе. евро. Дж. Плант Патол. 135, 633–639. doi: 10.1007/s10658-012-0121-3

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Nuñez, JHD, Aegerter, B.Дж., Болдуин, Р. А., Вестердал, Б. Б., Трамбл, Дж. Т., и Уилсон, Р. Г. (2019). Руководство по борьбе с вредителями UC IPM: Картофель. США: Калифорнийский университет.

Академия Google

Художник, Р. Х. (1951). Устойчивость сельскохозяйственных культур к насекомым. США: LWW.

Академия Google

Питман, А. Р., Дрейтон, Г. М., Крабергер, С. Дж., Женет, Р. А., и Скотт, И. А. (2011). Клубневая передача « Candidatus Liberibacter solanacearum» и ее связь с чипсами из зебры на картофеле в Новой Зеландии. евро. Дж. Плант Пато. 129, 389–398. doi: 10.1007/s10658-010-9702-1

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Pletsch, DJ (1947). Картофельная листоблошка, Paratrioza cockerelli (Sulc), ее биология и контроль. Бык. монт. сельскохозяйственный Эксп. стн. 446:95.

Академия Google

вечера. (2017). 9/25 (1) Bactericera cockerelli и « Candidatus Liberibacter solanacearum». Бюллетень ЕОКЗР. 47, 513–523.doi: 10.1111/epp.12442

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Прагер, С. М., Виндиола, Б., Кунд, Г. С., Бирн, Ф. Дж., и Трамбл, Дж. Т. (2013). Рекомендации по использованию неоникотиноидных пестицидов при борьбе с Bactericera cockerelli (Šulk) ( Hemiptera : Triozidae ). J. Защита растений. 54, 84–91. doi: 10.1016/j.cropro.2013.08.001

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Рашиди М., Новый Р. Г., Уоллис, К.М., и Рашед, А. (2017). Характеристика устойчивости растений-хозяев к болезни зебровых чипсов на основе видовых генотипов картофеля и выявление новых источников устойчивости к зебровым чипсам. PLoS One :12:e0183283. doi: 10.1371/journal.pone.0183283

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ричардс, Б. (1928). Новая разрушительная болезнь картофеля в штате Юта и ее связь с картофелем psylla. Фитопатология 18, 140–141.

Академия Google

Ричардс Б. и Блад Х. (1933). Псиллиды желтые у картофеля. Дж. Агрик. Рез. 46, 189–216.

Академия Google

Рохас, П., Родригес-Лейва, Э., Ломели-Флорес, Дж. Р., и Лю, Т.-Х. (2015). Биология и история жизни Tamarixia triozae , паразитоида листоблошки картофеля Bactericera cockerelli . биол. Контроль 60, 27–35. doi: 10.1007/s10526-014-9625-4

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Россон, П., Нимейер М., Пальма М. и Рибера Л. (2006). Экономическое воздействие чипсов из зебры на центр североамериканских исследований Картофельной промышленности Техаса. США: Техасский университет A&M.

Академия Google

Рубио-Коваррубиас, О., Кадена-Инохоса, М., Прагер, С., Уоллис, К., и Трамбл, Дж. (2017). Характеристика устойчивости к болезни зебровых чипсов клубней передовых линий картофеля из Мексики. утра. Дж. Пот. Рез. 94, 342–356. doi: 10.1007/s12230-017-9570-8

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Савари, С., Уиллоке Л., Петибридж С.Дж., Эскер П., Макробертс Н. и Нельсон А. (2019). Глобальное бремя патогенов и вредителей основных продовольственных культур. Нац. Экол. Эвол. 3, 430–439. doi: 10.1038/s41559-018-0793-y

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Secor, G., Rivera, V., Abad, J., Lee, I.-M., Clover, G., Liefting, L., et al. (2009). Связь « Candidatus Liberibacter solanacearum» с болезнью картофеля, вызванной чипсами зебры, установлена ​​с помощью трансплантата и листоблошки, электронной микроскопии и ПЦР. Завод Дис. 93, 574–583. doi: 10.1094/pdis-93-6-0574

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Секор, Г. А., и Ривера-Варас, В. В. (2004). Новые болезни культурного картофеля и их влияние на Латинскую Америку. Rev. Latinoamericana Papa 1, 1–8.

Академия Google

Сенгода, В.Г., Бухман, Дж.Л., Хенне, Д.К., Паппу, Х.Р., и Муньянеза, Дж.Е. (2013). Титр « Candidatus Liberibacter solanacearum» с течением времени в Bactericera cockerelli ( Hemiptera : Triozidae ) после получения от инфицированных растений картофеля и томата. Ж. эконом. Энтомол. 106, 1964–1972 гг. дои: 10.1603/ec13129

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Смит, CM (2005). Устойчивость растений к членистоногим: молекулярные и традиционные подходы. Нидерланды: Springer.

Академия Google

Спунер, Д.М., и Бамберг, Дж.Б. (1994). Генетические ресурсы картофеля: источники устойчивости и систематика. утра. Дж. Бот. 71, 325–337. дои: 10.1007/bf02849059

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Спунер, Д.М., Гислен М., Саймон Р., Янский С.Х. и Гавриленко Т. (2014). Систематика, разнообразие, генетика и эволюция дикого и культурного картофеля. Бот. Ред. 80, 283–383. doi: 10.1007/s12229-014-9146-y

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Шульц, К. (1909). Trioza cockerelli , новинка из Северной Америки, имеющая также экономическое значение. Акта Соц. Энтомол. Богема. 6, 102–108.

Академия Google

Самнер-Калкун, Дж.C., Highet, F., Arnsdorf, Y.M., Back, E., Carnegie, M., Madden, S., et al. (2020). Распространение и разнообразие Candidatus Liberibacter solanacearum в Шотландии и характеристика новых гаплотипов видов Craspedolepta ( Psyllidae : Aphalaridae ). наук. Респ. 10, 1–11. дои: 10.1007/978-3-319-23534-9_1

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Суишер, К.Д., Муньянеза, Дж.Е., и Кросслин, Дж.М. (2012).Анализ плавления с высоким разрешением гена цитохромоксидазы I идентифицирует три гаплотипа листоблошки картофеля в Соединенных Штатах. Окружающая среда. Энтомол. 41, 1019–1028. doi: 10.1603/en12066

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Swisher, K.D., Sengoda, V.G., Dixon, J., Munyaneza, J.E., Murphy, A.F., Rondon, S.I., et al. (2014). Оценка гаплотипов листоблошки картофеля в посевах картофеля в тихоокеанском северо-западе США. утра.Дж. Картофель Рез. 91, 485–491. doi: 10.1007/s12230-014-9378-8

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Свишер Гримм, К., и Гарчински, С. (2019). Выявление нового гаплотипа ‘ Candidatus Liberibacter solanacearum’ в Solanum tuberosum . Завод Дис. 103, 468–474.

Академия Google

Щепанец, А., Варела, К. А., Киани, М., Паецольд, Л., и Раш, К. М. (2019). Случаи устойчивости к неоникотиноидным инсектицидам у Bactericera cockerelli на юго-западе США. J. Защита растений. 116, 188–195. doi: 10.1016/j.cropro.2018.11.001

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Терезани Г. Р., Бертолини Э., Альфаро-Фернандес А., Мартинес К., Танака Ф.А.О., Китаджима Э.В. и др. (2014). Ассоциация « Candidatus Liberibacter solanacearum» с вегетативным заболеванием сельдерея в Испании и разработка метода ПЦР в реальном времени для его обнаружения. Фитопатология 104, 804–811. doi: 10.1094/фито-07-13-0182-р

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Теулон, Д., Уоркман П., Томас К. и Нильсен М. (2009). Расселение Bactericera cockerelli и текущее распространение на овощных культурах в Новой Зеландии. NZ Plant Prot. 62, 136–144. doi: 10.30843/nzpp.2009.62.4783

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Томас Дж., Гиринг А. и Мейнард Г. (2018). Обнаружение « Candidatus Liberibacter solanacearum» в помидорах на острове Норфолк. Австралия. Австралия. Завод Дис. Примечания 13:7.

Академия Google

USDA, Н. (2019). Картофель Итоги 2018 года. США: USDA.

Академия Google

Vereijssen, J., Smith, G.R., and Weintraub, P.G. (2018). Bactericera cockerelli ( Hemiptera : Triozidae ) и Candidatus Liberibacter solanacearum в картофеле в Новой Зеландии: биология, передача и последствия для управления. Дж. Интегр. Пешт Манаг. 9:13.

Академия Google

Верейссен, Дж., Taylor, N., Barnes, A., Thompson, S., Logan, D., Butler, R., et al. (2015). Первое сообщение о « Candidatus Liberibacter solanacearum» в иерусалимской вишне ( Solanum pseudocapsicum ) и терновнике ( Datura stramonium ) в Новой Зеландии. Новый Дис. Респ. 32:5197.

Академия Google

Уокер Г., Макдональд Ф., Ларсен Н. и Уоллес А. (2011). Мониторинг Bactericera cockerelli и связанных с ними популяций насекомых в картофеле в Южном Окленде. NZ Plant Prot. 64, 269–275. doi: 10.30843/nzpp.2011.64.6009

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Уоллис, Р. Л. (1955). Экологические исследования картофельной листоблошки как вредителя картофеля. Вашингтон: округ Колумбия

Академия Google

Вар, А. Р., Полрадж, М. Г., Ахмад, Т., Бухру, А. А., Хуссейн, Б., Игнасимуту, С., и др. (2012). Механизмы защиты растений от травоядных насекомых. Сигнал завода. Поведение 7, 1306–1320.doi: 10.4161/psb.21663

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Вэнь А., Маллик И., Альварадо В., Паше Дж., Ван Х., Ли В. и др. (2009). Обнаружение, распространение и генетическая изменчивость видов Candidatus Liberibacter, связанных с комплексной болезнью картофеля зебры в Северной Америке. Завод Дис. 93, 1102–1115. doi: 10.1094/pdis-93-11-1102

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Яо, Дж., Saenkham, P., Levy, J., Ibanez, F., Noroy, C., Mendoza, A., et al. (2016). Взаимодействия « Candidatus Liberibacter solanacearum » — Bactericera cockerelli : влияние гаплотипа на анализ пригодности вектора и экспрессии генов. Перед. Клетка. Заразить. микробиол. 6:62. doi: 10.3389/fcimb.2016.00062

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Болезнь Мягкие гниения картофеля

Введение

Мягкая гниль картофеля были вызваны ряд бактерий по всему миру, такими как Pectobacterium Carotovorum подвида Carotovorum , Pectobacterium Atrosepticum и Dickeya вид . Ранее эти бактерии относились к роду Erwinia .

P. atrosepticum редко встречается на картофеле в Западной Австралии.

Dickeya dianthicola впервые была обнаружена в Австралии в июне 2017 г. на урожае картофеля в Западной Австралии.

Симптомы

Промокшие участки мягких тканей типичны для инфекции мягкой гнили. Первоначально здоровая часть клубня четко отличима от мацерированной, кремообразной зараженной части, но в конечном итоге заражается весь клубень. Может появиться неприятный запах, поскольку картофель разрушается бактериями и когда появляются вторичные захватчики.

Отсутствие всходов, увядание, побурение тканей, высыхание ботвы и гибель растений связаны с заражением бактериями мягкой гнили. Этим симптомам способствуют прохладные, влажные почвы (10-15°C) при посадке и температура выше 20°C после появления всходов. Эти условия могут привести к черной ножке, когда бактерии проникают во внутреннюю сосудистую систему растения и вызывают увядание.

Распространение

Бактерии, вызывающие мягкую гниль, могут оставаться как в растениях, так и в клубнях картофеля без каких-либо явных симптомов — латентная инфекция. Симптомы бактерий мягкой гнили становятся очевидными только тогда, когда естественная сопротивляемость картофеля нарушена.

Основной причиной распространения являются раны или повреждения картофеля. Обычно это происходит во время сбора урожая и сортировки, что позволяет бактериям проникнуть в клубень. Когда это сочетается с водой на поверхности клубня, бактерии могут разрушить естественную защиту клубня и вызвать гниение клубня.

Мягкая гниль может развиваться при температуре от 16°C до 35°C. Высокие температуры создают идеальные условия, так как кислород в клубне быстро заменяется высоким уровнем углекислого газа, что вызывает нагрузку на клубень. Это приведет к заражению мягкой гнилью. Воздействие солнечного света также способствует развитию мягкой гнили, убивая клетки клубней. Наличие других заболеваний приведет к усилению инфицирования.

Мягкая гниль может распространяться через зараженные семена, причем инфекция в следующем поколении клубней тем выше, чем больше процент зараженного семенного картофеля.Мягкую гниль следует контролировать на протяжении всей жизни урожая, чтобы уменьшить ее воздействие на будущие поколения картофеля.

Руководство по борьбе с вредителями/Программа UC Statewide IPM (UC IPM)

Симптомы и признаки

Черная точка — это заболевание, поражающее корни, стебли и клубни и названное в честь маленьких черных точечных структур (склероций), которые образуются на поверхности зараженных стеблей, столонов и клубней. Черная точка впервые появляется в середине или конце сезона как пожелтение и увядание растений.Эти симптомы легко спутать с вертициллезным увяданием или ранним отмиранием, связанным с бактериальной мягкой гнилью. Увядание, вызванное черной точкой, развивается быстро, в отличие от вертициллезного увядания.

Возбудитель черной точки может вызывать сильное загнивание корковой ткани корней. Пораженные корни могут казаться жилистыми, когда их вытаскивают из почвы. В некоторых случаях поражения на подземных стеблях и столонах можно спутать с раком стебля Rhizoctonia и столонов; однако поражения черными точками темнее. У Tulelake на зараженных корнях часто отсутствуют темные пятна.Корковая ткань отслаивается, обнажая древесную сосудистую ткань, которая придает корням волокнистый, пропитанный водой вид аметистового цвета. Мелкие, темные, точечные грибковые структуры (склероции) почти всегда присутствуют вблизи уровня почвы при зрелых инфекциях. Также образуются спорообразующие образования (ацервули) с хорошо заметными волосками (щетинками). Клубни, пораженные черной пятнистостью, выглядят немного более темными или похожими на сыпь, которые очень напоминают серебристую паршу. Наличие склероций отличает черную точку от серебристого налета.Пятна на клубнях легко заметить, особенно когда клубни влажные. Еще одним распространенным признаком черной точки является прилипание столонов к стеблевым концам клубней.

Комментарии к болезни

Черная точка поражает другие растения семейства картофеля, в том числе помидоры, баклажаны и перец. Гриб, вызывающий черную точку, Colletotrichum coccodes, , сохраняется в виде склероций, которые образуются на клубнях, столонах, корнях и стеблях в конце сезона.Патоген может быть занесен на чистые поля через зараженные семенные клубни, а уровень заболеваемости возрастает на полях с коротким периодом возделывания между восприимчивыми культурами. Склероции могут длительное время сохраняться на растительных остатках в почве. Споры, образующиеся в ацервули на надземных частях растений, могут переноситься ветром на другие растения и вызывать инфекции при наличии ран.

Возбудитель черной точки часто поражает растения, ослабленные другими болезнями, и может ускорить раннюю гибель лоз, зараженных Verticillium, Pectobacterium (Erwinia) и, возможно, Phytophthora. Черная точка чаще всего возникает на растениях, выращенных на грубозернистых почвах в условиях низкого или чрезмерно высокого содержания азота, высокой температуры или плохого дренажа почвы. Заражение черными точками увеличивается из-за переносимого ветром песка, который может вызывать ссадины, обеспечивающие легкий доступ возбудителя.

Менеджмент

Сажайте сертифицированные семенные клубни, поддерживайте адекватные уровни питательных веществ и избегайте чрезмерного орошения. Когда поля заразятся, поверните культуры, не являющиеся хозяевами, такие как зерновые, в течение не менее 3 лет и контрольный картофель добровольцев и сорняков семейства картофельных в посевах севооборота.Нет сортов картофеля устойчивы, но ранние сорта могут избежать некоторого повреждения в зараженных полях, а клубни сортов красновато-коричневых поражаются менее сильно, чем клубни тонкокожих сортов.

Испытания эффективности различных фунгицидов показали, что, хотя существует несколько доступных фунгицидов, которые могут уменьшить симптомы корневой гнили и листвы, ни один из них не смог значительно уменьшить появление пятен на клубнях.

Общее имя Сумма на акр** REI‡ PHI‡
(пример торговой марки) (часы) (дней)
Меры предосторожности при обращении с пестицидами Берегите воду Рассчитать летучие органические соединения Берегите пчел
Перечислены не все зарегистрированные пестициды.Далее ранжированы пестициды с наибольшим значением IPM, перечисленные первыми, а наиболее эффективные и наименее вероятно вызывающие резистентность находятся в верхней части таблицы. При выборе пестицида учитывайте информацию, касающуюся свойств пестицида и сроков применения, медоносных пчел и воздействия на окружающую среду. Всегда читайте этикетку используемого продукта.
 
А. АЗОКСИСТРОБИН
  (Quadris Flowable и др.) 0,4–0,8 жидких унций/1000 футов ряда 4 14
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ПРИНЦИПА ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): Внешний ингибитор хинона (11)
  КОММЕНТАРИИ: Не наносите более 2,88 л/сезон. Группа QoI: с высоким риском развития резистентности. Известно, что резистентность встречается у различных видов грибов.
 
Б. АЗОКСИСТРОБИН/ДИФЕНОКОНАЗОЛ
  (Квадрис Топ) 8–14 жидких унций 12 14
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ПРИНЦИПА ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): Внешний ингибитор хинона (11)/ ингибиторы деметилирования (3)
  КОММЕНТАРИИ: Не применять более 55. 3 жидких унции Quadris Top за сезон, 0,46 фунта д.в. на акр за сезон продуктов, содержащих дифеноконазол, и не более 2,0 фунтов д.в. продуктов, содержащих азоксистробин.
 
К. МАНДИПРОПАМИД/ДИФЕНОКОНАЗОЛ
  (Топ Ревуса) 5,5–7,0 жидких унций 12 14
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): амиды карбоновых кислот (40)/ингибиторы деметилирования (3)
  КОММЕНТАРИИ: Не наносите более 28 жидких унций Revus Top, 0 за сезон.52 фунта д.в. на акр за сезон продукции, содержащей мандипропамид, и не более 0,46 фунта д.в. продуктов, содержащих дифеноконазол.
 
Д. БОСКАЛИД
  (Эндура) 2,5–4,5 унции 12 10
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): Ингибиторы сукцинатдегидрогеназы (7)
  КОММЕНТАРИИ: Допускается не более 20 унций на акр в год.
 
Э. ФАМОКСАДОН/ЦИМОКСАНИЛ
  (Танос) 6–8 унций 12 14
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ПРИНЦИПА ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): Внешний ингибитор хинона (11)/ Цианоацетамид-оксим (27)
  КОММЕНТАРИИ: Для достижения наилучших результатов в подавлении черной точки используйте баковую смесь с фунгицидом манкоцеб или манеб.
 
Ф. ПИРАКЛОСТРОБИН
  (Заголовок) 6–9 жидких унций 12 3
  НАИМЕНОВАНИЕ ГРУППЫ ПРИНЦИПА ДЕЙСТВИЯ (НОМЕР 1 ): Внешний ингибитор хинона (11)
  КОММЕНТАРИИ: Группа QoI: С высоким риском развития резистентности. Известно, что резистентность встречается у различных видов грибов.
Групповые номера
Ограниченный интервал входа (REI) — это количество часов (если не указано иное) с момента обработки до момента, когда в обрабатываемую зону можно будет безопасно войти без защитной одежды. Предуборочный интервал (PHI) — это количество дней от обработки до сбора урожая. В некоторых случаях REI превышает PHI. Более длинный из двух интервалов — это минимальное время, которое должно пройти до сбора урожая.
1 присваиваются Комитетом действий по устойчивости к фунгицидам (FRAC) в соответствии с различными способами действия.Фунгициды с другим номером группы подходят для чередования в программе управления резистентностью. В Калифорнии не более одного применения фунгицидов с номерами группы действия 1, 4, 9, 11 или 17 перед переходом на фунгицид с другим номером группы действия; для фунгицидов с другими номерами группы, сделать не более двух последовательных обработок перед переходом на фунгицид с другим номером группы режима действия.

Руководство UC IPM по борьбе с вредителями: картофель
Публикация UC ANR 3463

Дж.Нуньес (почетный), Кооперативное расширение Калифорнийского университета, округ Керн,

Б. Дж. Эгертер, Кооперативное расширение Калифорнийского университета, округ Сан-Хоакин,

Благодарность за вклад в развитие болезней

Р.М. Дэвис (почетный), патология растений, Калифорнийский университет в Дэвисе,

C. Смарт, патология растений, Калифорнийский университет в Дэвисе,

Текст обновлен: 19 марта

Таблица лечения обновлена: 19 марта

Общие болезни картофеля и физиологические проблемы

Общие болезни картофеля и физиологические проблемы

Содержание

  1. Фитофтороз
  2. Ранний упадок
  3. Черная ножка и надземная гниль стебля
  4. Ризоктония
  5. Вертициллез
  6. Мозаика и листовой рулон
  7. Загрязнение воздуха
  8. Белая форма
  9. Серая гниль Botrytis

Фитофтороз

Что искать:

  • На листьях: коричневые пятна, обычно со светло-зеленым ореолом.
    На нижней стороне листьев поражения окружает белый грибковый налет.
    Сухие поражения не имеют белого грибкового нароста.
  • На стеблях: пятна неправильной формы от темно-коричневого до черного цвета. Если влажность высокая, может развиться белый грибковый нарост. Зараженные стебли хрупкие и легко ломаются.

Распределение по полю:

  • В любом месте поля.
  • Благоприятствует высокая влажность.
  • Для прорастания спорам нужна вода.
  • Низкие места, пограничные ряды близко к линиям деревьев, центральная точка поворота и поворотные гусеницы, следует следить за уплотненными и заросшими участками дважды в неделю.

Ранний упадок

Что искать:

  • На листьях коричневые пятна от круглых до неправильных с концентрическими кольцами. Пятна обычно ограничены крупными венами.
  • Первые симптомы появляются на более старых нижних листьях.
  • Стрессовые растения склонны к фитофторозу.

Распределение по полю:

  • Ранняя гниль равномерно распределена по полю.
  • Заболеваемость может быть выше в местах, где растения находятся под стресс е.г. низинах с избыточной влажностью почвы.

Черная ножка и надземная гниль стебля

Что искать:

  • В начале сезона Зараженные растения низкорослые, желтоватые и выглядеть жестко.
  • Листовки имеют тенденцию закручиваться вверх по краям.
  • На стеблях наблюдается чернильно-черная гниль, которая начинается с семени. То гниль слизистая и распространяется на различное расстояние вверх по стеблю.
  • Вторичные бактерии, проникающие в пораженный участок, вызывают рыбный запах.
  • Воздушная гниль стебля похожа на черную ножку, но начинается над землей части стеблей, а не из семян.

Распределение по полю:

  • Везде в поле, потому что это заболевание передается семенами.
  • Надземная стеблевая гниль может развиться в любом месте поля.Низкие места при высокой влажности почвы может иметь более высокую заболеваемость.

Ризоктония

Что искать:

  • Низкорослые, слабые растения с коричневыми язвами на подземных стеблях.
  • Надземные клубни, образующиеся либо в пазухах листьев, либо у основания стеблей
  • У основания стеблей белый или серый налет грибкового налета (мицелий)
  • Продольные коричневые язвы на подземных стеблях.

Распределение по полю:

  • Где угодно в поле, но заболеваемость Rhizoctonia имеет тенденцию к быть выше на мокрых местах.

Вертициллез

Что искать:

  • Зараженные растения увядают днем, но восстанавливаются ночью.
  • Может быть поражено только 1 или 2 стебля на растение.
  • Пожелтение листьев сменяется побурением и некрозом.
  • Сосудистая область стеблей становится коричневой.
  • Филдс рано умирает

Распределение по полю:

  • Обычно пятнистый. Широко распространен на сильнозаселенных почвах при сезон сухой. Поля восприимчивых сортов могут рано погибнуть.
  • Симптомы появляются сразу после цветения

Мозаика и листовой рулон

Что искать:

  • Мозаика : Низкорослые растения, с морщинистыми листьями желтоватые или светло-зеленые пятна.
    Нижние листья желтеют и отмирают. Опавшие листья цепляются за стебель
  • Листовой рулон : Низкорослые прямостоячие растения. Нижние листья желтоватые, кожистые и скрученные

Распределение по полю:

Загрязнение воздуха

Что искать:

  • Пожелтение листьев и перцовая пятнистость или пятнистость. белый или обесцвеченные пятна.
  • Коричневые или темно-коричневые пятна правильной формы на листьях. Поражения ограничены крупными венами.
  • Одна сторона листьев может быть поражена сильнее, чем разное.
  • Глазурованная бронза на нижней стороне листьев.

Распределение по полю:

  • В любом месте поля.
  • Более высокая заболеваемость на полях вблизи оживленных автомагистралей

Белая плесень

Что искать:

  • Плотный белый мицелий на стеблях или листьях.
  • Зараженные участки стебля обесцвечиваются.
  • Сильно пораженные стебли становятся полыми.
  • Черные склероции образуются внутри или на стебле.

Распределение по полю:

  • В любом месте поля. Плотные кроны и высокая влажность благоприятствуют разработка белой плесени

Серая гниль Botrytis

Что искать:

  • Молодые поражения выглядят как пропитанные водой пятна.
  • Позже поражения становятся коричневыми с концентрическими кольцами.
  • Поражения обычно развиваются на кончиках и краях листьев.
  • Во влажную погоду на очагах поражения образуется плотный серый мицелий.

Распределение по полю:

  • В любом месте поля. Этому заболеванию способствует влажная погода.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.